تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,485,718 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,213,137 |
تاثیر فرآوری کنجاله کلزا و کنجاله سویا با سطوح مختلف تانن استخراج شده از پوست پسته بر بخشهای مختلف پروتئین خام بر اساس سیستم CNCPS | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
مقاله 5، دوره 28، شماره 2، شهریور 1397، صفحه 51-63 اصل مقاله (983.77 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
علی رضا جولازاده؛ مهدی دهقان بنادکی* ؛ کامران رضایزدی | ||
گروه علوم دامی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: بهبود ارزش غذایی مواد خوراکی مورد استفاده در تغذیه نشخوارکنندگان با استفاده از روشهای فرآوری مناسب و کاربردی نقش مهمی در کاهش هزینههای تولید و بهبود عملکرد تولیدی دامها دارد. هدف: هدف از این پژوهش مطالعه اثر سطوح مختلف تانن استخراج شده از پوست پسته بر زیر بخشهای پروتئین کنجاله کلزا وکنجاله سویا بر اساس سیستم کربوهیدرات و پروتئین خالص کرنل (CNCPS) بود. روش کار: ابتدا پوسته پسته آفتاب خشک توسط الکهایی با قطر منافذ 5/0 میلیمتر آسیاب شده و بهمدت 24 ساعت با نسبت 1 به 10 (پوست پسته:آب) در آب خیسانده شد. بهمنظور تهیه عصاره صاف شده، خیساب پوست پسته از صافی عبور داده شد. سپس عصاره صاف شده و به منظور به دست آوردن عصاره غلیظ شده که حاوی 11 درصد فنول کل و 13/7 درصد تانن کل در ماده خشک عصاره بود در آب جوشانده شد. سپس کنجاله ها در شش سطح مختلف شاهد (بدون عصاره حاوی تانن)، 5، 10 ، 15 ، 20 و 30 (گرم تانن/ 100 گرم ماده خشک کنجاله سویا و یا کنجاله کلزا) فرآوری شدند. سپس بخش های پنج گانه پروتئین آنها بر اساس سیستم CNCPS اندازه گیری شد. نتایج: بر اساس نتایج بدست آمده سطح 5 درصد فرآوری کنجاله کلزا کمترین بخش محلول (مجموع A،B1 ) را در مقایسه با سایر سطوح نشان داد. همچنین با افزایش سطوح فرآوری مقدار بخشC کاهش یافت. در مورد کنجاله سویا فرآوری در سطح 30 درصد باعث تغییر نسبت بخشهای محلول (مجموع A و B1 ) (37/12 درصد) و بخش های نامحلول (مجموع B2 ،B3 و C) (62/87 درصد) در مقایسه با تیمار شاهد (فرآوری با آب) )05/0p <) و سایر سطوح گردید. تانن استخراج شده از پوست پسته باعث کاهش تجزیه پذیری شکمبهای پروتئین کنجاله سویا در مقیاس آزمایشگاهی شد، ولی در مورد کنجاله کلزا تجزیه پذیری شکمبهای را افزایش داد. نتیجه گیری نهایی: در نهایت چنین به نظر میرسد که تانن استخراج شده از پوست پسته تاثیرات متفاوتی بر روند تجزیه پذیری بخشهای مختلف پروتئین خام کنجاله سویا و کنجاله کلزا داشته است ولی استفاده از روشهای درون تنی برای تایید این نتایج ضروری به نظر میرسد. | ||
کلیدواژهها | ||
کنجاله سویا؛ کنجاله کلزا؛ تانن؛ پوست پسته؛ سیستم | ||
مراجع | ||
Association of Official Analytical Chemists (AOAC), 1990. Official methods of analysis, 15th edition. AOAC, Washington, DC, USA.
Alipour D and Rouzbehan Y, 2010. Effects of several levels of extracted tannin from grape pomace on intestinal digestibility of soybean meal. Livestock Science 128:87-91.
Barry T and Manley T, 1984. The role of condensed tannins in the nutritional value of Lotus pedunculatus for sheep. 2. Quantitative digestion of carbohydrates and proteins. The British journal of nutrition, 51:493.
Behgar M, Ghasemi S, Naserian A, Borzoie A and Fatollahi, H, 2011. Gamma radiation effects on phenolics, antioxidants activity and (in vitro) digestion of pistachio (Pistachia vera) hull. Radiation Physics and Chemistry 80:963-967.
Capparucci C, Gironi F and Piemonte V, 2011. Tannins Extraction from Walnuts Residues. Chemical Engineering 24.
Dentinho M, Moreira O, Pereira M and Bessa R, 2007. The use of a tannin crude extract from Cistus ladanifer L. to protect soya-bean protein from degradation in the rumen. Animal. 1: 645–650.
Driedger A and Hatfield EE, 1972. Influence of tannins on the nutritive value of soybean meal for ruminants. Journal of Animal Science. 34(3), 465-468.
El-Waziry AM, Nasser MEA and Sallam SMA, 2005. Processing methods of soybean meal: 1-effect of roasting and tannic acid treated-soybean meal on gas production and rumen fermentation in vitro. Journal of Applied Sciences 1(3): 313-320.
Frutos P, Hervás G, Giráldez FJ, Fernández G and Mantecón AR, 2000. Digestive utilization of quebracho-treated soya bean meals in sheep. Journal of Agricultural Science 134:101-108.
González S, Pabon ML and Carulla J, 2005. Effects of tannins on in vitro ammonia release and dry matter degradation of soybean meal. Archivos Latinoamericanos de Produccian Animal 10 (2).
Guo X, Ding W, Han J and Zhou H, 2008. Characterization of protein fractions and amino acids in ensiled alfalfa treated with different chemical additives. Animal Feed Science and technology 142:89-98.
Hagerman AE, 1988. Extraction of tannin from fresh and preserved leaves. Journal of Chemical Ecology 14:453-461.
Hagerman AE, Riedl KM, Jones GA, Sovik KN, Ritchard NT, Hartzfeld PW and Riechel TL, 1998. High molecular weight plant polyphenolics (tannins) as biological antioxidants. Journal of Agricultural and Food Chemistry 18;46(5):1887-1892.
Hagerman AE, Riedl KM and Rice RE, 2000. Tannins as biological antioxidants. In: Plant Polyphenols 2. Springer. pp 495-505.
Haslam E, 1989. Plant polyphenols: vegetable tannins revisited, CUP Archive.
Hervás G, Frutos P, Serrano E, Mantecón AR and Giráldez FJ, 2000. Effect of tannic acid on rumen degradation and intestinal digestion of treated soya bean meals in sheep. Journal of Agricultural Science 135 (3), 305-310.
Jolazadeh AR, Dehghan-banadaky M and Rezayazdi K, 2015. Effects of soybean meal treated with tannins extracted from pistachio hulls on performance, ruminal fermentation, blood metabolites and nutrient digestion of Holstein bulls. Anim Feed Sci Tech, 203: 33-40.
Khalilvand-behroozyar H, Dehghan-banadaky M and Rezayazdi K, 2010. The effects of phenolic compounds deactivation through different treatments on Sainfoin hay chemical composition, and a determination of its crude protein fractioning in AFRC and CNCPS system. Iranian Journal of Animal Science, 41(4): 391-403. (In Persian).
Licitra G, Hernandez T and Van Soest P, 1996. Standardization of procedures for nitrogen fractionation of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology 57:347-358.
Makkar H and Singh B, 1992. Detannification of oak (Quercus incana) leaves: treatments and their optimization. Animal Feed Science and Technology 36:113-127.
Makkar H, 2003. Effects and fate of tannins in ruminant animals, adaptation to tannins, and strategies to overcome detrimental effects of feeding tannin-rich feeds. Small Ruminant Research 49:241-256.
Makkar, HPS, 2000. Quantification of Tannins Tree and Shrub Foliage. A Labora-tory Manual for the FAO/IAEA Co-ordinated Research Project on Use of Nuclear and Related Techniques to Develop Simple Tannin Assays for Predicting and Improving the Safety and Efficiency of Feeding Ruminants on Tanniniferous Tree Foliage. Joint FAO/IAEA of Nuclear Techniques in Food and Agriculture.Animal Production and Health Sub-Programme, FAO/IAEA Working Document, IAEA, Vienna, Austria. y Manual. Kluwer Academic Pub-lishers, p. 102.
Martinez T, Moyano F, Díaz M, Barroso F and Alarcón, 2004. Ruminal degradation of tannin‐treated legume meals. Journal of the Science of Food and Agriculture 84:1979-1987.
Mezzomo R, Paulino P, Detmann E, Valadares F, Paulino M, Monnerat J, Duarte M, Silva L and Moura L, 2011. Influence of condensed tannin on intake, digestibility, and efficiency of protein utilization in beef steers fed high concentrate diet. Livestock Science 141:1-11.
Naczk M, Amarowicz A, Sullivan A and Shahidi F, 1998. Current research developments on polyphenolics of rapeseed/canola: a review. Food Chemistry 62:489-502.
Nishimuta JF, Ely DG and Boling JA, 1974. Ruminal bypass of dietary soybean protein treated with heat, formalin and tannic acid. Journal of Animal Science. 39(5), 952-957.
Reed JD, 1995. Nutritional toxicology of tannins and related polyphenols in forage legumes. Journal of animal science 73:1516-1528.
Silanikove N, Perevolotsky A and Provenza FD, 2001. Use of tannin-binding chemicals to assay for tannins and their negative postingestive effects in ruminants. Animal Feed Science and Technology 91:69-81.
Sniffen C, connor JO, Van Soest P, Fox D and Russell J, 1992. A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets: II. Carbohydrate and protein availability. Journal of Animal science 70:3562-3577.
Stern MD, 1981. Ruminal protein degradation and intestinal amino acid supply. In: Proceedings of the Minnesota Nutrition Conference, Livestock Science. pp. 23–39.
Vahdani N, Dehghan Banadaky M, Rezayazdi K and Khalighi-Sigaroodi F, 2016. Effects of semi-pure tannin usage, on crude protein fractions of soy bean meal and canola meal by CNCPS, Iranian Journal of Animal Science 47(2): 261-270. (In Persian).
Valizadeh R and Naserian AA, 2009. Influence of drying and ensiling pistachio by-products with urea and molasses on their chemical composition, tannin content and rumen degradability parameters. Journal of Animal and Veterinary Advances 89:69-81.
Van Soest PV, Robertson J and Lewis B, 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science 74:3583-3597.
Zhao G, Xue Y, Li Y and Zhang W, 2008. The estimation of duodenal utilizable true protein in sheep fed mixed rations using the nitrogenous fractions of the Cornell Net Carbohydrate and Protein System. Small Ruminant Research 76:190-194. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 571 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 854 |