تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,306 |
تعداد مقالات | 15,982 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,405,821 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,165,948 |
تاثیر گیاه کنوکارپوس عملآوری شده با باکتریهای تولید کننده تاناز بر رفتار مصرف خوراک، قابلیت هضم و فراسنجههای خونی و شکمبهای گوسفند عربی | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
دوره 33، شماره 1، خرداد 1402، صفحه 141-155 اصل مقاله (499.94 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2021.43684.1598 | ||
نویسندگان | ||
طاهره محمدابادی* 1؛ راضیه عیدی پور2؛ محمدرضا مشایخی3 | ||
1دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان | ||
2دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان | ||
3مرکز تحقیقات صفی آباد دزفول | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: استفاده از برگ و سرشاخه کنوکارپوس موجود در مناطق گرمسیری به صورت جاگیزین با بخشی از جیره گوسفند میتواند سودمند باشد. هدف: این آزمایش با هدف بررسی تاثیر جایگزینی بخشی از سیلاژ ذرت با گیاه کنوکارپوس عملآوری شده با باکتریهای تولید کننده تاناز در جیره گوسفند عربی انجام شد. روش کار: در این آزمایش تعداد 16 رأس بره نر عربی با میانگین وزن 25±3 کیلوگرم در قالب طرح کاملا تصادفی استفاده شدند. تیمارهای آزمایشی عبارت بودند از: ۱) جیره شاهد (فاقد کنوکارپوس)، ۲) جیره حاوی 5/12 درصد کنوکارپوس عملآوری شده توسط باکتری A6، تولیدکننده تاناز (BA6) 3) جیره حاوی 5/12 درصد کنوکارپوس عملآوری شده توسط باکتریA8 ، تولید کننده تاناز (BA8) و 4) جیره حاوی 5/12 درصد کنوکارپوس بدون عملآوری (WB). در پایان آزمایش خوراک مصرفی، رفتار مصرف خوراک، قابلیت هضم مواد مغذی، فراسنجه-های تخمیری شکمبه، جمعیت پروتوزوآ و فراسنجههای خونی بررسی شدند. نتایج: میزان خوراک مصرفی تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی کاهش یافت (05/0>P). مدت زمان مصرف خوراک و جویدن به طور معنیداری تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی کاهش یافت (05/0>P). بیشترین میزان قابلیت هضم ماده آلی در تیمار عملآوری شده با باکتری A6 مشاهده شد (05/0>P). کمترین میزان قابلیت هضم الیاف نامحلول در شوینده خنثی و اسیدی در تیمار WB مشاهده شد (05/0>P). بیشترین و کمترین میزان pH به ترتیب در تیمارهای کنترل و WB مشاهده شد (05/0>P). غلظت نیتروژن آمونیاکی و جمعیت پروتوزوآ به طور معنیداری تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی کاهش یافت (05/0>P). غلظت استات به طور معنیداری تحت تاثیر تیمارهای BA6 و BA8 افزایش یافت (05/0>P). همچنین بیشترین میزان بوتیرات در تیمار WB مشاهده شد (05/0>P). تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی غلظت گلوکز و نیتروژن اورهای خون به طور معنیداری کاهش یافت (05/0>P). کمترین میزان آلکالین فسفاتاز در تیمار کنترل مشاهده شد (05/0>P). نتیجهگیری نهایی: با توجه به اثرات مثبت فرآوری کنوکارپوس با باکتریهای تجزیه کننده تانن نسبت کنوکارپوس بدون باکتری بر برخی از فاکتورهای اندازهگیری شده و از طرفی با توجه به عدم تاثیر منفی بر سلامت دامها شاید بتوان گفت عملآوری این گیاه برای کاهش تانن راهکاری مناسب برای استفاده کنوکارپوس در جیره برههای پرواری باشد. | ||
کلیدواژهها | ||
باکتریهای تجزیه کننده تانن؛ رفتار مصرف خوراک؛ فراسنجههای خونی و شکمبهای؛ کنوکارپوس؛ گوسفند عربی | ||
مراجع | ||
Al-Koaik F, El-Waziry AM, Khalil AI, Metwally H and Al-Mahasneh MA, 2014. Evaluation of conocarpus (Conocarpus erectus) leaves and Bermuda grass (Cynodon dactylon L.) using chemical analysis and In vitro gas production technique. Bulgarian Journal of Agricultural Science 20(4): 824-829.
Association of Official Analytical Chemist, AOAC, 1998. Official methods of analysis. 16th rev. Assoc. Off. Anal. Chem., Arlington, VA.
Bhat TK, Singh B and Sharma OP, 1998. Microbial degradation of tannins–a current perspective. Biodegradation 9: 343-357.
Broderick GA and Kang JH, 1980. Automated simultaneous determination of ammonia and total amino acids in ruminal fluid and in vitro media. Journal of Dairy Science 63: 64-75.
Brogna DMR, Nasri S, Ben Salem H, Mele M, Serra A, Bella M, Priolo A, Makkar HPS and Vasta V, 2011. Effect of dietary saponins from Quillaja saponaria L. on fatty acid composition and cholesterol content in muscle Longissimus dorsi of lambs. Animal 1-7.
Chaji M, Direkvandi E and Salem, AZM, 2020. Ensiling of Conocarpus erectus tree leaves with molasses, exogenous enzyme and Lactobacillus plantarum impacts on ruminal sheep biogases production and fermentation. Agroforestry Systems 94: 1611-1623.
Chaudhary LC, Agarwal N, Verma V, Rikhari K and Kamra DN, 2011. Effect of feeding tannin degrading bacteria (Isolate-6) on rumen fermentation, nutrient utilization and growth performance of goats fed on Ficus infectoria leaves. Small ruminant research 99(2-3): 143-147.
Dehority BA, 2003. Rumen microbiology. British Library Cataloguing in Publication Data. First published.
Direkvandi E, Mohammadabadi T, Chaji M, Elghandour MM, Barbabosa-Pleigo A and Salem AZM, 2020. Effect of sulfuric acid and molasses on the chemical composition, ruminal fermentation, and digestibility of silage of Conocarpus erectus L. tree leaves and branches. Agroforestry Systems 94: 1601-1609.
Ehsen S, Qasim M, Abideen ZA, Rizvi RF, Gul B, Ansari R and Khan MA. Secondary metabolites as anti-nutritional factors in locally used halophytic forage/fodder. Pakistan Journal of Botany 48(2): 629-36.
Frutos P, Hervás G, Giráldez García F and Mantecón A, 2004. Review. Tannins and ruminant nutrition. Spanish Journal of Agricultural Research, 2: 191-202.
Gamble GR, Akin DE, Makkar HP and Becker K, 1996. Biological degradation of tannins in sericea lespedeza (Lespedeza cuneata) by the white rot fungi Ceriporiopsis subvermispora and Cyathus stercoreus analyzed by solid-state 13C nuclear magnetic resonance spectroscopy. Applied and Environmental Microbiology. 62(10): 3600-3604.
Givens DI, Owen E, Axford RFE and Omed HM, 2000. Forage Evaluation in Ruminant Nutrition, 1th ed. CABI Publishing, Wallingford, UK, pp. 480 pp.
Goel G, Puniya A, Aguilar C and Singh K, 2005. Interaction of gut microflora with tannins in feeds. Naturwissenschaften 92: 497-503.
Hiura T, Hashidoko Y, Kobayashi Y and Tahara S, 2010. Effective degradation of tannic acid by immobilized rumen microbes of sika deer (Cervus nippon yesoensis) in winter. Animal feed Science and Technology 155(1): 1-8.
Hosseini F, 2018. Investigating the nutritional value of Conocarpus (Conocarpus erectus) in dry or treated silage form, in fattening lamb. M.Sc. Thesis in the Field of Animal Nutrition, Agricultural Sciences and Natural Resources University of Khuzestan.
Jafari-Tapeh H, Hamidi–Esfahani Z and Azizi, MH, 2012. Culture Condition Improvement for phytase production in solid state fermentation by Aspergillus ficuum using statistical method. ISRN Chemical Cngineering 10: 5402- 5404.
Kondo M, Hidaka M, Kita K and Yokota HO, 2007. Feeding value of supplemented diet with black tea by‐product silage: Effect of polyethylene glycol addition to the diet on digestibility of protein fractions in goats. Grassland science 53(3): 131-137.
Kondo M, Kita K and Yokota HO, 2004. Feeding value to goats of whole-crop oat ensiled with green tea waste. Animal feed science and technology 113(1-4): 71-81.
Kumar K, Chaudhary LC, Agarwal N and Kamra DN, 2014. Effect of feeding tannin degrading bacterial culture (Streptococcus gallolyticus strain TDGB 406) on nutrient utilization, urinary purine derivatives and growth performance of goats fed on Quercus semicarpifolia leaves. Journal of animal physiology and animal nutrition 98(5): 879-885.
Landau S, Silanikove N, Nitsan Z, Barkai D, Baram H, Provenza FD and Perevolotsky A, 2000. Short-term changes in eating patterns explain the effects of condensed tannins on feed intake in heifers. Applied Animal Behaviour Science 69(3): 199-213.
Mahapatra K, Nanda RK, Subh ndu SB, Banerjee R, Pandey A and Szakacs, G, 2005. Purification, characterization and some studies on secondary structure of tannase from Aspergillus awamorinakazawa. Process Biochemistry 40: 3251-3254.
Makkar HP, 2003. Effects and fate of tannins in ruminant animals, adaptation to tannins, and strategies to overcome detrimental effects of feeding tannin-rich feeds. Small ruminant research 49(3): 241-256.
Martin DWJ, Mayes PA, Rodwell VW, Lemonde A and Nicole L, 1985. Précis de biochimie de Harper. 6e edition Les presses de l'Université Laval/Editions ESKA.
Matsuda M and DeFronzo RA, 1999. Insulin sensitivity indices obtained from oral glucose tolerance testing: comparison with the euglycemic insulin clamp. Diabetes care 22(9): 1462-1470.
Merck, 2012. The Merck veterinary manual: Serum biochemicalreference ranges. Accessed Feb. 26, 2013.www.merckmanuals.com/vet/appendixes/reference_guides/serum_biochemical_reference_ranges.html.
Miller S, Brooker J and Blackall L, 1995. A feral goat rumen fluid inoculum improves nitrogen retention in sheep consuming a mulga (Acacia aneura) diet. Crop and Pasture Science, 46: 1545-1553.
Mohammadabadi T, 2020. Effect of using pruning foliage of conocarpus on digestibility, rumen fermentation and blood parameters of Arabi sheep. Animal Production Research 9(3): 59-69. (In Persian).
Mohammadabadi T, Jolazadeh A, Ghezi Z, 2020. Effect of treated Conocarpus erectus L. leaves with Klebsiella pneumoniae and Acinetobacter as tannin-degrading bacteria on digestion activity of rumen microorganisms. Biotechnology in Animal Husbandry 36(1): 1-6.
Mohammadabadi T, Gheibipour M, Motamedi H, Chaji M and Basil A. Abbas, B.A, 2021. Isolation and identification of tannin-degrading bacteria from deer gut and potency for improving nutritional value of tannin rich plant. Iranian Veterinary Journal 17 (1): 65-75.
Moir RJ, 1951. The seasonal variation in the ruminal microorganisms of grazing sheep. Australian Journal of Agricultural Research 2: 322-330.
Mosleh H Naghiha A, Keshtkaran AN and Khajavi M, 2014. Isolation and identification of tannin-degrading bacteria from native sheep and goat feces in Kohgiloye and Boyer-Ahmad Province. International Journal of Advanced Biological and Biomedical Research, 2: 176-180.
Mousa MRM, 2011. Effect of Feeding Acacia as Supplements on the Nutrient Digestion, Growth Performance, Carcass Traits and Some Blood Constituents of Awassi Lambs under the Conditions of North Sinai. Asian Journal of Animal Sciences 5: 102-117.
NRC (National Research Council), 2007. Nutrient requirements of small ruminants. National Academy Press, Washington, DC.
Pathak NN, Kamra DN and Jakhmola RC, 1996. Analytical Techniques Animal Nutrition Research, International Book Distributing Co., India, P. 201.
Pell AN, Wooslton TK, Nelson KE and Schofield PN, 2000. Tannins: biological activity and bacterial tolerance. In: Brooker, J. D. (EB), Tannins in livestock and human nutrition. Prociding International. Workshop. Adelaide, Austalia. Australian Center for International Agricultural Research Proceeding 92: 111-116.
Rezaeenia A, Naserian AA, Valizadeh R and Tahmasbi A, 2012. Effect of using different levels of pistachio by-products silage on composition and blood parameters of Holstein dairy cows. African Journal of Biotechnology 11(22): 6192-6196.
SAS (Statistical Analysis System), 2008. SAS/STAT 9.2 user’s guide. Cary (NC): SAS Institute Inc.
Shakeri P, Riasi A, Alikhani M, Fazaeli H and Ghorbani GR, 2013. Effects of feeding pistachio by‐products silage on growth performance, serum metabolites and urine characteristics in Holstein male calves. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition 97(6): 1022-1029.
Van Soest PV, Robertson JB and Lewis BA, 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science 74(10): 3583-3597.
Williams AG and Coleman GS, 1992. The Rumen Protozoa. Springer-Verlag, New York, NY.
Yanez Ruiz DR, Moumen A, Mart´ınGarc´ıa AI and Molina Alcaide E, 2004. Ruminal fermentation and degradation patterns, protozoa population, and urinarpurine derivatives excretion in goats and wethers fed diets based on two-stage olive cake: effect of PEG supply. Journal of Animal Science 82: 2023- | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 217 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 205 |