تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,489,212 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,216,892 |
تاثیر روش خیساندن بر مقدار ترکیبات زیست فعال و خواص ضدمیکروبی گلنار فارسی | ||
پژوهش های صنایع غذایی | ||
دوره 33، شماره 1، فروردین 1402، صفحه 1-15 اصل مقاله (571.67 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/fr.2023.47254.1799 | ||
نویسندگان | ||
لیلا ناطقی* 1؛ پیمان رجایی2؛ علیرضا ملکی کهکی3 | ||
1دانشگاه آزاد اسلامی،واحد ورامین پیشوا،گروه علوم وصنایع غذایی،ورامین، ایران | ||
2Assistant Prof. Dept. of Food Science and Technology, Faculty of Agriculture, Islamic Azad University, Varamin, Iran | ||
3دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین پیشوا، گروه علوم و صنایع غذایی، ورامین، ایران | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: میوه انار( گلنار فارسی) یکی از مهمترین محصولات کشاورزی و گیاهان دارویی به علت وجود تانن و ترکیبات پلی فنولیک، خواص آنتی اکسیدانی و ضد میکروبی در درمان بیماری ها و به عنوان نگهدارنده طبیعی بکار می رود. هدف کلی از این تحقیق بررسی تاثیر سه متغیر نوع حلال، زمان و دما بر میزان استخراج فلاوونوئیدها، IC50 و آنتوسیانینها و اثر ضد میکروبی عصاره بهینه استخراج شده به روش خیساندن از گلنار فارسی بود. روش کار: بدین منظور اثر نوع حلال (آب و متانول 80 %)، زمان (12، 30 و48 ساعت) و دما (20، 35 و 50 درجه سانتی گراد) بر مقدار ترکیبات زیست فعال و خواص ضدمیکروبی گلنار فارسی مورد بررسی قرار گرفت. 18 تیمار مطابق با روش سطح پاسخ باکس بنکن طراحی شد. نتایج: بهینهسازی همزمان شرایط استخراج عصاره از گلنار فارسی با هدف دستیابی به بالاترین میزان ترکیبات فلاونوئیدی، آنتوسیانینی و خواص آنتیاکسیدانی، با 614/95 % مطلوبیت در شرایط زمان استخراج 48 ساعت، دما C°50 و استفاده از حلال متانول پیشبینی شد. در شرایط مذکور میزان فلاونوئید mg/g 6216/8، میزان آنتوسیانین µmol/g 7365/5 و میزان (mg/ml)IC50، 2793/7 بود. بالاترین مقدار میانگین حداقل غلظت مهارکنندگی (MIC) و حداقل غلظت کشندگی(MBC) عصاره گلنار فارسی استخراج شده در شرایط بهینه بر علیه باکتریهای استافیلوکوکوس اورئوس، اشرشیاکلای و کلستریدیوم پریفرانژنز به ترتیب 5/468 و 1875 µg/ml ، 5/937 و 3750 µg/ml، 5/937 و 5000 µg/ml بود. تیمار بهینه به روش خیساندن اثر ضد میکروبی بیشتری علیه باکتری استافیلوکوکوس اورئوس با بیشترین قطر هاله ی عدم رشد (mm13) در مقایسه با اشرشیاکلای وکلستریدیوم پریفرانژنز داشت. نتیجهگیری نهایی: نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد با بهینه سازی شرایط استخراج میتوان میزان قابل توجهی از ترکیبات ضد میکروبی و آنتیاکسیدانی از گیاه گلنار فارسی استخراج نمود و از آن در صنایع غذایی و داروسازی استفاده نمود. | ||
کلیدواژهها | ||
"؛ آنتوسیانین"؛ آنتیاکسیدان"؛ خیساندن"؛ فلاونوئید"؛؛ "؛ گلنار فارسی" | ||
مراجع | ||
احمدی الف، عبداللهی ع، فصیحی رامندی م، نامدار ن، موسوی م و سمیع زاده ب، 1395، ارزیابی فعالیت آنتیباکتریال و تعیین میزان فنل تام عصاره هیدروالکلی گل انار فارسی P unica granatum. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا، 6(3)، 319-325.
سلاحورزی ی، تهرانیفر ع وجهانبخش و، 1390، ارتباط فعالیت آنتیاکسیدانی و ضدقارچی عصاره قسمتهای مختلف انار (Punica granatum L.) با محتوای فنولیکی آن. تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران, 27(1)، 47-56.
متینی س، مرتضوی ع،صادقیان ع و شریفی الف، 1399، بهینهسازی فرایند استخراج ترکیبات زیست فعال از تفاله انگور سیاه سردشت به روشهای فراصوت و غرقابی با استفاده از متدولوژی سطح پاسخ. علوم و صنایع غذایی ایران، 17(98)، 147-158.
حسینی ح،1397، اهمیت زنجیره غذایی پایدار در تأمین امنیت غذایی و توسعه پایدار، مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران 13(1)، 127.
Abdolahi N, Soltani A, Mirzaali A, Soltani S, Balakheyli H, & Aghaei M, 2018. Antibacterial and antioxidant activities and phytochemical properties of Punica granatum flowers in Iran. Iranian Journal of Science and Technology, Transactions A: Science 42(3), 1105-1110.
Aliyari P, Bakhshi Kazaj F, Barzegar M, & Ahmadi Gavlighi H, 2020. Production of functional sausage using pomegranate peel and pistachio green hull extracts as natural preservatives. Journal of Agricultural Science and Technology 22(1), 159-172.
Chang C.C, Yang M.H, Wen H M, & Chern JC, 2002. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colometric methods. Journal of food and drug analysis 10(3), 3.
Cushnie T.T, & Lamb A. J, 2005. Antimicrobial activity of flavonoids. International journal of antimicrobial agents 26(5), 343-356.
Celiktas O.Y, Kocabas E.H, Bedir E, Sukan F.V, Ozek T, & Baser K.H. C, 2007. Antimicrobial activities of methanol extracts and essential oils of Rosmarinus officinalis, Depending on location and seasonal variations. Food Chemistry 100(2), 553-559.
Chitra K, Venkatesh R, Dhanalakshmi K, Sharavanan P.T, Bali Sasikumar C, & Karthikeyani Vijayakumari K, 2018. Production and economic analysis of oyster mushroom (Pleurotus florida). International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences 7(9), 379-383.
Dahham S.S, Ali M.N, Tabassum H, & Khan M, 2010. Studies on antibacterial and antifungal activity of pomegranate (Punica granatum L.). American-Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Science 9(3), 273-281.
Davarynejad G, Taghizadeh S.F, & Asili J, 2017. Effect of different solvents on total phenolic contents and antioxidant activity of Zizyphus jujube Miller fruits. Journal of Horticultural Science 31(1), 158-166.
Do Q.D, Angkawijaya A.E, Tran-Nguyen P.L, Huynh L.H, Soetaredjo F.E, Ismadji S, & Ju Y.H, 2014. Effect of extraction solvent on total phenol content, total flavonoid content, and antioxidant activity of Limnophila aromatica. Journal of food and drug analysis 22(3), 296-302.
Ebrahimzadeh M.A, Pourmorad F, & Hafezi S, 2008. Antioxidant activities of Iranian corn silk. Turkish Journal of biology 32(1), 43-49.
Giusti M.M, & Wrolstad R.E, 2001. Characterization and measurement of anthocyanins by UV‐visible spectroscopy. Current protocols in food analytical chemistry 1, 1-2.
Gavanji S, Larki B, Bakhtari A, 2014. The effect of extract of Punica granatum var. pleniflora for treatment of minor recurrent aphthous stomatitis. Integrative medicine research 3(2):83-90.
Gavanji S, Larki B, & Bakhtari A, 2015. Comparative analysis of extract of Punica granatum var. pleniflora (Golnar-e-farsi) to some antibiotics on pathogens. Journal of Essential Oil Bearing Plants 18(1), 168-178.
Harikrishnan R, Rani M.N, & Balasundaram C, 2003. Hematological and biochemical parameters in common carp, Cyprinus carpio, following herbal treatment for Aeromonas hydrophila infection. Aquaculture 221(1-4), 41-50.
Heinrich M, Williamson E.M, Gibbons S, Barnes J, & Prieto-Garcia J, 2017. Fundamentals of pharmacognosy and phytotherapy E-BOOK. Elsevier Health Sciences.
Ismail E, Diallo A, Khenfouch M, Dhlamini S M, & Maaza M, 2016. RuO2 nanoparticles by a novel green process via Aspalathus linearis natural extract & their water splitting response. Journal of Alloys and Compounds 662, 283-289.
Jafari S.M, Ghalenoei M.G, & Dehnad D, 2017. Influence of spray drying on water solubility index, apparent density, and anthocyanin content of pomegranate juice powder. Powder Technology 311, 59-65.
Jurenka J, 2008. Therapeutic applications of pomegranate (Punica granatum L.): a review. Alternative medicine review 13, 2.
Kabiri S, & Sayyed-Alangi S.Z, 2015. Comparison of Antioxidant effect of different extracts from Melissa officinalis leaves with immersion and microwave-assisted extractions and its oxidative stability on soybean oil. Innovative Food Technologies 2(4), 23-38.
Kaderides K, Papaoikonomou L, Serafim M, & Goula A.M, 2019. Microwave-assisted extraction of phenolics from pomegranate peels: Optimization, kinetics, and comparison with ultrasounds extraction. Chemical Engineering and Processing-Process Intensification 137, 1-11.
Kaveh S, Sadeghi Mahoonak A, & Sarabandi K, 2020. The Effect of Solvent Type, Time and Extraction Method on the Chemical Compositions and Antioxidant Activity of Eggplant Peel Extract. karafan scientific semi-annual 17(2), 129-141.
Khalili M, & Ebrahimzadeh M. A, 2015. A review on antioxidants and some of their common evaluation methods. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences 24(120), 188-208.
Le X.T, Huynh M.T, Pham T.N, Than V.T, Toan T.Q, Bach L.G, & Trung N.Q, 2019. Optimization of total anthocyanin content, stability and antioxidant evaluation of the anthocyanin extract from Vietnamese Carissa carandas L. fruits. Processes 7(7), 468.
Rapisarda P, Fanella F, & Maccarone E, 2000. Reliability of analytical methods for determining anthocyanins in blood orange juices. Journal of Agricultural and Food Chemistry 48(6), 2249-2252.
Salmanian S, Sadeghimahoonak A, Jamson M, & Tabatabaee Amid B, 2013. Identification and quantification of phenolic acids, radical scavenging activity and ferric reducing power of Eryngium caucasicum Trautv. ethanolic and methanolic extracts. Research and Innovation in Food Science and Technology 2(2), 193-204.
Sottero B, Leonarduzzi G, Testa G, Gargiulo S, Poli G, & Biasi F, 2019. Lipid oxidation derived aldehydes and oxysterols between health and disease. European journal of lipid science and technology 121(1), 1700047.
Tajkarimi M.M, Ibrahim S.A, & Cliver D.O, 2010. Antimicrobial herb and spice compounds in food. Food control 21(9), 1199-1218.
Tekin Z, Küçükbay F. Z, & Dikme A, 2020. In Vitro Antioxidant Activities of Methanol Extracts of Three Achillea Species from Turkey. Journal of the Turkish Chemical Society Section A: Chemistry 8(2), 483-490.
Yao X.H, Zhang D.Y, Zu Y.G, Fu Y.J, Luo M, Gu C.B, & Efferth T, 2013. Free radical scavenging capability, antioxidant activity and chemical constituents of Pyrola incarnata Fisch leaves. Industrial crops and products 49, 247-255.
Yang Y, Song X, Sui X, Qi B, Wang Z, Li Y, & Jiang L, 2016. Rosemary extract can be used as a synthetic antioxidant to improve vegetable oil oxidative stability. Industrial Crops and Products 80, 141-147.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 573 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 440 |