آمار
| تعداد نشریات | 43 |
| تعداد شماره‌ها | 1,262 |
| تعداد مقالات | 15,535 |
| تعداد مشاهده مقاله | 51,553,433 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 14,493,558 |
Detection of carrier cattle infected to Theileria annulata by molecular assay in northwest of Iran | ||
| پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
| دوره 30، شماره 4، اسفند 1399، صفحه 95-101 اصل مقاله (812.88 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2021.42894.1594 | ||
| نویسندگان | ||
| احمد نعمت الهی* 1؛ پریسا شهبازی2؛ صمد ابراهیمیان2؛ بلال حسن زاده2 | ||
| 1گروه پاتوبیولوژی-دانشکده دامپزشکی- دانشگاه تبریز | ||
| 2گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی ، دانشگاه تبریز | ||
| چکیده | ||
| Bovine theileriosis due to Theileria annulata is one of the most important diseases in livestock animals in the world. The disease is transmitted by Ixodidae ticks and characterized by fever, enlargement of lymphatic glands, cachexia and death. The detection of theileriosis is enforcement by the blood smear staining with Giemsa. These techniques are suited diagnosing acute infection but are not in carrier animals, where infection rate may be little. The aim of present study was to the detection of carrier cattle to T. annulata in blood samples by PCR and comparison with the staining method in the northwest of Iran. Materials and Methods: A total number of 281 peripheral blood samples were obtained from apparent healthy cattle of different ages and in native and crossbreed cattle in the northwest of Iran in summer 2019. Samples were obtained from animals showing no clinical signs. The age range of cattle was 1-8 years. Samples were detected by Giemsa staining and light microscopic observation and PCR method based on applying the specific primers from the major merozoite-piroplasm surface antigen sequence of T. annulata (Tams-1) gene. A chi-square test was performed to compare prevalence related to breed and age categories. Results: In the microscopic method 25 samples (8.89%), were positive. However, the PCR detected 108 samples (38.43 %) positive for T. annulata. In positive samples of cattle, the highest prevalence was recorded in cattle 2-5 years old (22.4%). These differences in age results were significant (p <0.05). Out of 108 samples positive by PCR, 45 samples (41.66%) were native cattle and, 63(58.33%) were crossbreed cattle, whereas this difference was not significant. Conclusion: Our results showed that there is a high percentage of carriers cows in northwest of Iran and indicate a high potential risk for the infestation of healthy animals and vectors of the disease. زمینه مطالعاتی : تیلریوز گاوی ناشی از تیلریا آنولاتا یکی از بیماریهای مهم در حیوانات مزرعه در جهان می باشد. این بیماری توسط کنه های ایکسودیده منتقل شده و با تب، بزرگی غدد لنفاوی ، لاغری مفرط و مرگ مشخص می شود. تشخیص این بیماری بر اساس رنگ آمیزی گسترشهای خونی به روش گیمسا انجام می گیرد. این روش برای تشخیص عفونت حاد مناسب می باشد اما برای تشخیص حاملین بیماری که میزان آلودگی آنها کمتر می باشد مناسب نیست. هدف: این مطالعه جهت تشخیص حاملین بیماری ناشی از تیلریا آنولاتا توسط نمونه های خونی و مقایسه آن با روش مولکولی PCR در گاوان شمالغرب کشور انجام پذیرفت. روش کار : تعداد 281 نمونه خونی از گاوان بومی و دو رگه به ظاهر سالم با سنین مختلف در شمالغرب کشور در تابستان سال 1398 اخذ شد. نمونه ها بعد از تهیه گسترش و رنگ آمیزی به روش گیمسا در زیر میکروسکپ نوری بررسی شدند و روش واکنش زنجیره ای پلیمراز (PCR) با استفاده از پرایمر های تهیه شده از آنتی ژن سطحی مروزوئیت انگل که ژن (Tams-1) را کد می کنند انجام شد. آزمون مربع کای جهت جهت مقایسه میزان شیوع بیماری در ارتباط با نژاد و سن حیوانات کار گرفته شد. نتایج: در روش میکروسکپیک تعداد 25 نمونه (89/8%) نمونه ها از لحاظ آلودگی انگلی مثبت تشخیص داده شد ولی در روش PCR 108 نمونه (43/38%) نمونه ها مثبت تشخیص داده شد. در نمونه های مثبت گاوان بیشترین میزان شیوع در گاوان 5-2 ساله (4/22 %) مشاهده شد که این تفاوت معنی دار بود(0،05>P) . در بین 108 نمونه مثبت تشخیص داده شده با PCR 45 مورد (66/41 %) در گاوان بومی و 63 مورد (33/58 %) در گاوان دورگه شناخته شد. نتیجه گیری: نتایج بررسی حاضر میزان بالای گاوان حامل بیماری تیلریوزیس را نشان داد که این موضوع نشانگر پتانسیل بالای خطر آلودگی برای حیوانات سالم و ناقلین بیماری می باشد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| تیلریا آنولاتا؛ حامل؛ روش رنگ آمیزی؛ PCR؛ ایران | ||
| مراجع | ||
|
Altay K, Aydin MF, Dumanli N and Aktas M, 2008. Molecular detection of Theileria and Babesia infections in cattle. Veterinary Parasitology 158(1-2) 295-301.
Azizi H, Shiran B, Farzaneh-Dehkordi A, Salehi F and Taghadosi C,2007. Detection of Theileria annulata by PCR and its comparison with smear method in native carrier cows. Biotechnology 7: 574-577.
Bartlett JMS and Striling D, 2003. Extraction of DNA from whole blood in: Methods in molecular biology, PCR protocols.2nd ed. Totowa,NJ: Humans Press Inc.
Bilgic BH, Karagenc T, Simuunza M, Shiels B, Tait A, Eren H and Weir W,2013. Development of multiplex PCR assay for simultaneous detection of Theileria annulata, Babesia bovis and Anaplasma marginale in cattle. Experimental Parasitology 133:(2) 222–229.
d’Oliveira C, Van-der Weide M, Habela A, Jacquiet P, Jongejan F,1995. Detection of Theileria annulata in blood samples of carrier cattle by PCR. Journal of Clinical Microbiology 33(10):2665–2669.
Dumanli N, Aktas M, Cetinkaya B, Cakmak A, Koroglu E, Saki CE, Erdogmus Z, Nalbantoglu S, Ongor H, Simsek S, Karahan M,Altay K, 2005.Prevalence and distribution of tropical theileriosis in eastern Turkey. Veterinary Parasitology 127(1):9–15.
Ghatak S, Muthukumaran RB, Nachimuthu SK, 2013. A simple method of genomic DNA extraction from human samples for PCR-RFLP analysis. Journal of Biomolecular Techniques 24(4):224-225.
Hoghooghi-Rad N, Ghaemi P, Shayan P, Eckert B, Sadr-Shirazi N,2011. Detection of native carrier cattle infected with Theileria annulata by Semi-bested PCR and smear method in golestan province of Iran. World Applied Sciences Journal 12(3): 317-323.
Khattak R, Hameed H, Taqddus A, Faryal M, Durranis S, Gillani QUA, Allahyar R, Shaikh RS,2012. A comparison of two different techniques for the detection of blood parasite, Theileria annulata, in cattle from two districts in Khyber Pukhtoon Khwa Province (Pakistan). French Society of Parasitology 19(1): 91.
Kirvar E, Ilhan T, Katzer F, Hooshmand-rad P, Zweygarth E, Gerstenberg C, Phipps P, Brown CG,2000. Detection of Theileria annulata in cattle and vector ticks by PCR. Parasitology 120(3):245–254.
KundaveVR, Patel PV,Hasani JJ,Joshi CG,2013. Detection of theileriosis in cattle and buffaloes by Polymerase chain reaction. Journal of parasitic diseases 39(3): 508–513.
Larcombe SD, Kolte SW,Ponnudurai G, Kurkure N, Magar A, Alagesan A, Weir, Shiels BR,2019. The impact of tick-borne pathogen infection in Indian bovines is determined by host type but not the genotype of Theileria annulata. Infection, Genetics and Evolution 75:103-109.
Minjauw B and Mc Leod A, 2003. Tick-borne diseases and poverty: the impact of ticks and tick-borne diseases on the livelihood of small scale and marginal livestock owners in India and eastern and southern Africa. Animal Health Program, DFID Animal Health Program:1–124
Nourollahi-Fard SR, Khalili M, Ghalekhani, N,2015. Detection of Theileria annulata in blood samples of native cattle by PCR and smear method in Southeast of Iran. Journal of Parasitic Diseases 39(2):249-52.
Shahnavaz S, Ali M, Aslam MA, Fatima R, Chaudhry ZI, Hassan MU, Ali M, Iqbal F,2011. A study on the prevalence of a tick transmitted pathogen, Theileria annulata, and hematological profile in cattle from Southern Punjab. Parasitology Researches 109(4):1155-1160.
Schnittger L, Yin H, Qi B, Gubbels M J, Beyer D, Niemann S, Jongejan F, Ahmed J S,2004. Simultaneous detection and differentiation of Theileria and Babesia parasites infecting small ruminants by reverse line blotting. Parasitology Researches 92(3):189–196.
Soulsby EJL, 1982. Helminthes, arthropods and protozoa of domesticated animals, 7th ed. London: Bailliere Tindall.
Thillampala S, Hamel K, Sembulutti AEA, Singarayer CV, Asela SM, Dilhani TH, Thamotharampillari O, Subramaniyam S, Kulanayagam K, Alawattage DNC, Ikuo I,Naoaki Y,2012. A PCR-based survey of selected Babesia and Theieria parasites in cattle in SriL anka. Veterinary Parasitology 190(1-2):263-267. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 516 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 289 |
||