تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,487,081 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,214,010 |
بررسی اثرات عصاره گیاه شاه اسپرم (Tanacetum balsamita L.) بر برخی از فراسنجههای کیفی اسپرم قوچ مغانی پس از انجماد و یخگشایی | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
دوره 30، شماره 4، اسفند 1399، صفحه 71-82 اصل مقاله (921.36 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2021.38678.1560 | ||
نویسنده | ||
وحید واحدی* | ||
عضو هیأت علمی گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان- دانشگاه محقق اردبیلی | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: طی مراحل انجماد و یخگشایی اسپرم، استرس اکسیداتیو باعث کاهش تحرک، زندهمانی، یکپارچگی غشاء، ظرفیت آنتی اکسیدانی و در نهایت میزان باروری اسپرم میشود. گیاه شاه اسپرم به دلیل داشتن ترکیبات فنولیک دارای خاصیت آنتی اکسیدانی میباشد. هدف: در این مطالعه تأثیر عصاره گیاه شاه اسپرم به عنوان یک آنتی اکسیدان طبیعی بر کیفیت اسپرم منجمد-یخگشایی شده قوچ مغانی مورد بررسی قرار گرفت. مواد و روشها: برای این منظور در فصل تولیدمثلی از چهار رأس قوچ مغانی 4-3 ساله با میانگین وزنی 70 کیلوگرم، هفتهای دو بار اسپرمگیری شد. سپس نمونهها با رقیقکننده بر پایه زرده تخممرغ-سیترات حاوی سطوح مختلف عصاره گیاه شاه اسپرم (0، 2، 4، 8، 12 و 16 میلیلیتر در دسیلیتر محلول رقیق کننده) رقیق شدند. نمونهها پس از طی مراحل سردسازی تا دمای 4 درجه سانتیگراد، به مدت 8 دقیقه روی بخار ازت منجمد شده و تا زمان ارزیابی در داخل ازت مایع نگهداری شدند. پس از یخگشایی، فراسنجههای حرکتی اسپرم به وسیله سیستم کاسا، زندهمانی به روش رنگآمیزی ائوزین-نیگروزین، تست یکپارچگی غشاء با محلول هایپواسموتیک و تعیین اسپرمهای ناهنجار با محلول هانکوک مورد بررسی قرار گرفت. نتایج: غلظتهای 8 و 12میلیلیتر در دسیلیتر عصاره گیاه شاه اسپرم، به طور معنیداری تحرک کلی و تحرک پیش رونده اسپرم را نسبت به گروه شاهد بهبود داد (05/0p <). درصد فراسنجههای VSL، VCL و VAP در تیمارهای 8 و 12 میلیلیتر نسبت به تیمارهای شاهد و 16 میلیلیتر بالاتر بود (05/0p <). درصد فراسنجه LIN در تیمار 8 میلی-لیتر نسبت به 16 میلیلیتر بالاتر بود. بالاترین درصد زندهمانی اسپرم مربوط به تیمار 12 میلیلیتر و بالاترین درصد یکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم مربوط به تیمار 8 و 12 میلیلیتر بود (05/0p <). درصد اسپرم ناهنجار در تیمار 12 میلیلیتر نسبت به تیمارهای شاهد و 2 میلیلیتر کمتر بود (05/0p <). نتیجهگیری نهایی: به طور کلی استفاده از 12 میلیلیتر در دسیلیتر عصاره گیاه شاه اسپرم در رقیقکننده منی سبب بهبود کیفیت اسپرم منجمد-یخگشایی شده قوچ شد. | ||
کلیدواژهها | ||
: آنتی اکسیدان؛ اسپرم قوچ؛ عصاره شاه اسپرم؛ منجمد-یخگشایی؛ یکپارچگی غشایی | ||
مراجع | ||
Agarwal A, Nallella KP, Allamaneni SS and Said TM, 2004. Role of antioxidants in treatment of male infertility: an overview of the literature. Reproductive BioMedicine Online 8: 616-27.
Aitken RJ and Sawyer D, 2003. The human spermatozoon – not waving but drowning. Advances in Experimental Medicine and Biology 518: 85-98.
Aitken RJ and Drevet JR, 2020. The importance of oxidative stress in determining the functionality of mammalian spermatozoa: a two-edged sword. Antioxidants 9(2):111.
Arora A, Nair GM and Strasburg MG, 1998. Structure activity relationships for antioxidant activities of a series of flavonoids in a liposomal system. Free Radical Biology and Medicine 2: 1355-1363.
Bączek KB, Kosakowska O, Przybył JL, Pióro-Jabrucka E, Costa R, Mondello L and Węglarz Z, 2017. Antibacterial and antioxidant activity of essential oils and extracts from costmary (Tanacetum balsamita L.) and tansy (Tanacetum vulgare L.). Industrial Crops and Products 102: 154–163.
Baghshahi H, Riasi A, Mahdavi AH and Shirazi A, 2014. Antioxidant effects of clove bud (Syzygium aromaticum) extract used with different extenders on ram spermatozoa during cryopreservation. Cryobiology 69: 482-487.
Bansal AK and Bilaspuri GS, 2011. Impacts of oxidative stress and Antioxidants one semen functions. Veterinary Medicine International Article ID 686137: 1-7.
Benedec D, Filip L, Vlase L, Bele C, Sevastre B, Raita O, Olah NK and Hanganu D, 2016. In vitro study of antioxidant activity and phenolic content of Chrysanthemum balsamita varieties. Journal of Pharmaceutical Sciences 29(4): 1359–1364.
Bilodeau JF, Chatterjee S, Sirard MA and Gagnon C, 2000. Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. Molecular Reproduction and Development 55: 282-288.
Blokhina O, Virolainen E and Fagerstedt KV, 2003. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. Annals of Botany 91: 179-194
Bucak MN, Tuncer PB, Sarıözkan S, Başpınar N, Taşpınar M, Çoyan K, Bilgili A, Akalın PP, Büyükleblebici S, Aydos S and Ilgaz S, 2010. Effects of antioxidants on post-thawed bovine sperm and oxidative stress parameters: antioxidants protect DNA integrity against cryodamage. Cryobiology 61: 248-53.
Chatterjee S, Lamirande E and Gagnon C, 2001. Cryopreservation alters membrane sulfhydryl status of bull spermatozoa: protection by oxidized glutathione. Molecular Reproduction and Development 60: 498-506.
Clulow JR, Mansfield LJ, Morris LHA, Evans G and Maxwell WMC, 2008. A comparison between freezing methods for the cryopreservation of stallion spermatozoa. Animal Reproduction Science 108: 298-308.
Daghigh Kia H, Farhadi R, Ashrafi I and Mehdipour M, 2016. Anti-oxidative effects of ethanol extract of origanum vulgare on kinetics, microscopic and oxidative parameters of cryopreserved Holstein bull spermatozoa. Iranian Journal of Applied Animal Science 6(4): 783-789.
Daghigh Kia H, Olfati-Karaji R, Hoseinkhani A and Ashrafi I, 2014. Effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) extracts and glutathione antioxidants on bull semen quality after cryopreservation. Spanish Journal of Agricultural Research 17(12): 98-105.
Daghigh Kia H, Sadeghi Sadegh Abad F, Mohamadzadeh H, Vaseghi Dodran3and H and Ashrafi I, 2017. The effect of origanum vulgare extract as natural antioxidant on quality cryopreserved ram sperm. Journal of Animal Science Researches 26(4): 111-120. (In Persian)
Faraloni C, 2018. Antioxidant Property and Antimicrobial Activity of the Aromatic Plant Balsamita major Desf. International Journal of Clinical and Medical Microbiology 3: 138.
Hassanpouraghdam MB, Tabatabaie SJ, Nazemyieh H, Afla-tuni A and Esnaashari S, 2008. Chemical composition of the volatile oil from aerial parts of Tanacetum balsamita growing wild in northwest of Iran. Croatica Chemica Acta 12(3): 26-35.
Ivănescu BI, Tuchiluș CR, Corciovă AN, Lungu CR, Mihai CT, Gheldiu AM and Vlase LA, 2018. Antioxidant, antimicrobial and cytotoxic activity of Tanacetum vulgare, Tanacetum corymbosum and Tanacetum macrophyllum extracts. Farmacia 66(2): 282-288.
Javanmardi J, Stushnoffb C, Lockeb E and Vivancob JM, 2003. Antioxidant activity and total phenolic content of Iranian Ocimum accessions. Food Chemistry 83: 547–55.
Jeong SY, Kim DR, Kim KC, Nam DU and Ahn Lee SC, 2004. Effect of seed roasting conditions on the antioxidant activity of defatted sesame meal extracts. Food and Chemical Toxicology 69: 377-381.
Khodaei Motlagh M, Sharafi M, Zhandi M, Mohammadi-Sangcheshmeh A, Shakeri M, Soleimani M and Zeinoaldini S, 2014. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) extract in soybean lecithin-based semen extender following freeze–thawing process of ram sperm. Cryobiology 69: 217–222
Lessard C, Parent S, Leclerc P, Bailey JL and Sullivan R, 2000. Cryopreservation Alters the Levels of the Bull Sperm Surface Protein P25b. Journal of Andrology 21: 700-707.
Lotfipour F, Samiee M and Nazemiyeh H, 2007. Evaluation of the antibacterial activity of Salvia sahendica and Phlomis caucasica. Pharmaceutical Sciences 1: 29-34.
Malo C, Gil L, Gonzalez N, Martínez F, Cano R, de Blas I and Espinosa E, 2010. Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology 61: 142-147.
Malo C, Gil L, Cano R, Martínez F and Galé I, 2011. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) on boar epididymal spermatozoa during cryopreservation. Theriogenology 75: 1735–1741.
Purdy PH, 2006. A review on goat sperm cryopreservation. Small Ruminant Research 63: 215-225.
Rice-Evans C, Miller NJ and Paganga G, 1997. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Sciences 2: 152-159.
Roca J, Gil MA, Hernandez M, Parrilla I, Vazquez JM and Martinez EA, 2004. Survival and fertility of boar spermatozoa after freeze–thawing in extender supplemented with butylated hydroxytoluene. Journal of Andrology 25: 397–405.
Scandalios JG, 2002. Oxidative stress responses - what have genome-scale studies taught us?. Genome Biology 3(7): 1019.1–1019.6.
Shahhoseini R, Azizi M, Asili J, Moshtaghi N and Samiei L, 2019. Comprehensive Assessment of Phytochemical Potential of Tanacetum parthenium (L.): Phenolic Compounds, Antioxidant Activity, Essential Oil and Parthenolide. Journal of Essential Oil Bearing Plants 22(3): 614-629.
Vahedi V, Hedayat Evrigh N, Behroozlak M and Dirandeh E, 2018. Antioxidant effects of thyme (Thymus vulgaris L.) extract on ram sperm quality during cryopreservation. Iranian Journal of Applied Animal Science 8(2): 263-269
Yanishlieva NV and Marinova EM, 1996. Antioxidative effectiveness of some natural antioxidants in sunflower oil. Zeitschrift für Lebensmittel-Untersuchung und Forschung 203(3): 220–223.
Zanganeh Z, Zhandi M, Zare Shahneh A, Najafi A, Nabi M and Mohammadi-Sangcheshmeh A, 2013. Does rosemary aqueous extract improve buck semen cryopreservation? Small Ruminant Research 114(1): 120. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 770 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 508 |