تعداد نشریات | 43 |
تعداد شمارهها | 1,262 |
تعداد مقالات | 15,535 |
تعداد مشاهده مقاله | 51,553,528 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 14,493,671 |
تاثیر کاربرد باکتری آنتاگونیست Bacillus subtilis وسالیسیلیک اسید در گیاه گوجه فرنگی در برابر پژمردگی فوزاریومی و Meloidogyne javanica | ||
پژوهش های کاربردی در گیاهپزشکی | ||
مقاله 1، دوره 6، شماره 4، اسفند 1396، صفحه 1-10 اصل مقاله (614.59 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
سمانه دشتی پور* 1؛ نوازاله صاحبانی2؛ حشمت اله امینیان2 | ||
1دانش آموخته کارشناسی ارشد بیماری شناسی گیاهی پردیس ابوریحان دانشگاه تهران | ||
2دانشیار، گروه گیاهپزشکی پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، تهران. | ||
چکیده | ||
چکیده دراین تحقیق اثرات مستقیم کاربرد باکتری آنتاگونیست Bacillus subtilis و اسید سالیسیلیک بررشد قارچ فوزاریوم Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici در شرایط آزمایشگاهی در قالب آزمون تقابل و مواد فرار مورد بررسی قرار گرفت. اثرغلظتهای مختلف اسید سالیسیلیک (8-دو میلی مولار) بررشد فوزاریوم به روش اختلاط با محیط کشت آزمایش شد. در آزمایش گلخانه ای اثرات القایی اسیدسالیسیلیک و Bacillus subtilisبرتغییر فعالیتهای آنزیمی فنیل آلانین آمونیالیاز به عنوان یکی از آنزیمهای مهم دفاعی گیاه، در گوجهفرنگی آلوده به پژمردگی فوزاریومی و Meloidogyne javanica ودرحالت تعامل دو بیماری مورد بررسی قرار گرفت. طبق نتایج، کلیه غلظت های اسید سالیسیلیک به طور کامل از رشد قارچ عامل بیماری جلوگیری کرد. در تست تقابل و مواد فرار باکتری به طور معنیداری موجب کنترل موثر فوزاریوم شد که به ترتیب 8/34 و35 درصد بوده است. ارزیابی فعالیت آنزیم فنیل آلانین آمونیالیاز نشان داد که تمام تیمارهای باکتری و اسید سالیسیلیک به طور موثری موجب افزایش سطح فعالیت آنزیم در مقایسه با شاهد و گیاهان آلوده به فوزاریوم و نماتد شدند و بیشترین میزان فعالیت آنزیم در تیمار آلوده به پاتوژن ها همراه با باکتری و اسید سالیسیلیک درروز پنجم بعداز مایه زنی بود. | ||
کلیدواژهها | ||
واژه های کلیدی: فوزاریوم؛ نماتد گره ریشه؛ فنیل آلانین آمونیالیاز؛ سالیسیلیک اسید و Bacillus | ||
مراجع | ||
سیاهپوش س، ۱۳۸۹.کاربرد تلفیقی باکتریBacillus cereusوسالیسلیکاسید علیه نماتد مولدگره ریشه Meloidogyne javanicaروی خیار، پایان نامه کارشناسی ارشد پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران Batta Y A, 1999. Biological effect of two strains of microorganisms antagonistic to Botrytis cinerea: causal organism of gray mold on strawberry. An- Najah Univ.J.Res. Natural Sci. 13: 67-83. Buchenauer H, 1998. Biological control of soil- borne diseases by rhizobacteria.Journal ofPlantDisease and Protection 105: 329-348. Chen C , Belanger RR , Benhamou N, PaulitzTC, 2000.Defense enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant-grow-promoting rhizobacteria (PGPR) and Pythiumaphanidermatum .Physiological and Molecular Plant Pathol56:13-23. Dennis C, Webster J, 1971b. Antagonistic Properties of Species Groups of Trichoderma (production of non-volatile antibiotics)Transaction of the British Mycological Society 57:41-48. Etebatian H R, Scholberg P L, Eastwell KC, Sayler R, 2005.Biological control of apple blue mold with pseudomonas fluerescens.Can. J Microbiol51:591-598. Fiddaman PJ and Rossa l S, 1993.The production of antifungal volatiles Bacillus subtilis. Journal of Applied Bacteriology 74: 119-126. Fradkin A and Patrick Z A, 1985. Interaction between conidia of Cochilobolus sativum and soil bacteria as affected by physical contact andexogenus nutrients. Canadian Journal of Plant Pathology 7,7-18. Gamliel A, Katan T, Yunis H and Katan J.1996.Fusarium wilt and crown rot of sweet basil:involvement of soilborne and airborne inoculums.Phytopathol86:56-62. Guestky R, Shtienberg D, EladYandDinoor A, 2001.Combining biocontrolageuts to reduce variability of biological control, phytopathology 91:261-267Handelsman, J., and Stabb, V.1996. Biocontrol of soil borneplant pathogens. The Plant Cell 8:1855-1869. Hussey RS, Barker KR, 1973, A comparision of methods of collecting inocula of Meloidogynespp. Including a new technique, Plant Disease Reporter 57:1025-1028. International Oxon, UK, 320 pp. Jayaraj J, Yi H, Liang GH, Muthukrishnan S Velazhahan R, 2004. Foliar application of B. subtilisAUBS1 reduces sheath blight and triggers defense mechanisms in rice. Journal of Plant Diseases and Protection115-125. Jepson S B, 1987. Identification of Root-knot nematodes. Cambrian New Ltd. Jin, R.D., Suh, J.W., Park, RD Kim, YW Krishnan, HB and KimKY. 2005. Effect of chitin compost and broth on biological control of Meloidogyne incognita on tomato (Lycopersiconesculentum Mill).Nematology 7(1):125-132. Kloepper JW, Ryu C M and Zhang S. 2004.Induced systemic resistance and promotion of plant growth by Bacillus spp. Phytopathology 94: 1259–1266. Mehdikhani E, Kheiri A, Mohammadi M, Eshtiaghi H, Okhovvat M, 2003. Three new records of Meloidogyne species for Iran. Iranian Journal Plant Pathology 39: (3, 4). 189-211. Naserinasab F, Sahebani N , Etebarian HR, 2011.Biological control of Meloidogynejavanicaby TrichodermaharzianumBI and Salicylic acid on Tomato Afr. J. Food Sci. 5(3) pp. 276 – 280. Ogallo J L and Mcclure M A, 1996. Systemic acquired resistance and susceptibility to root-knot nematode in tomato phytopathology 86:498-501. Oka Y, Cohen Y and Speigel Y. 1999.Local and systemic induced resistance to the root knot tomato by DL– O-amino-n-butyric acid. Phytopathology 89: 1138–1143. Oostendorp M and Sikora RA, 1989. Seed treatment with antagonistic bacteria for the suppression of Heteroderaschachtii early root infection of sugar beet. Review de Nematologie 12: 77-83. Pavaraj M, Karthikairaj K, Rajan MK, 2010. Effect of leaf extract of Ageratiumconyzoides on biochemical profile of black gram, Vignamungo infected by root-knotnematode, M. incognita. J Biopest 3: 313-316. Powel NT, 1971. Interactions betweennematodes and fungi in disease complexes .Ann .Rev .Phytopath. 9:253-274. Reuveni Rand Bothma G C,1985. The relationship between promydaseactivity and resistance of Sphaerotca fuligena in melons, Phytopathologisclie Zeitschrift 114-260. Sahebani N, 2004. Interaction M. javanicawith Fusariumoxysporumf.splycopersiciand evaluation some defence biochemical mechanisms [PhD]. [Tehran (Iran)]: University of Tehran. Sikora RA, 1988. Interrelationship between plant health promoting rhizobacteria, plant parasitic nematodes and soil microorganisms. Meded. Fac. Landb Wet. Rijksunive. Gent, 53:867-878. Sikora R A, Fernandez E, 2005. Nematode parasites of vegetables.Pp.319-392 in M. Luc, R.A. Steiner, U andSchonbeck, F,1995. Induced disease resistance in monocots,In: Hammerschmidt, R., and Kuc, J. Induced resistance to disease in plant, Kluwer Academic publisher, Dordrecht Boston London 86-109. Thompson D C, 1996.Evaluation of bacterial antagonists for reduction of summer patch symptoms Kentucky bluegrass, Plant disease 80:850-862. Thordal-Christensen,H, 2003.Fresh insights into processes of nonhostresistance.Curr.Opin. Plant Biol. 6:351-357. Ton J, Van PeltJA,Van Loon LC and Pieterse CMJ, 2001. Differential effectiveness of salicylate-dependent and hasmonate/ethylene-dependent induced resistance in Arabidopsis. Mpmi.15:27-34. Van Loon LC, BakkerPA HMandPieterse CMJ, 1998. Systemic resistance induced by rhizosphere bacteria. Annu. Rev. Phytopathol. 36: 453-483. Van LoonL C, 2007. Plant responses to plant growth-promoting rhizobacteria. European Journal of Plant Pathology 119: 243-254. Van Loon L C, 2000. Systemic induced resistance. In: Mechanism of resistance to plant diseases, Slusarenko AJ, Fraser RSS and Van Lon LC. (eds) Kluwer,Dordrecht,pp521-574. Westcott C, 1979. Plant disease Hand Book.4th edition.Published by Van NostrandReihold Company, London.803PP. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 833 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 761 |