تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,485,621 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,213,103 |
ارزیابی فعالیت آنتی اکسیدانی و تغییرات فیزیولوژیکی در گلابی بعد از مایه زنی با باکتری مولد بیماری آتشک (Erwinia amylovora) | ||
پژوهش های کاربردی در گیاهپزشکی | ||
مقاله 10، دوره 6، شماره 2، شهریور 1396، صفحه 107-120 اصل مقاله (740.66 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
مهسا باغبانی1؛ جواد عرفانی مقدم* 2؛ خشنود نورالهی2 | ||
1دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام. | ||
2استادیار گروه علوم باغبانی و گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام. | ||
چکیده | ||
چکیده به منظور بررسی فعالیت آنتیاکسیدانی در ارقام گلابی درگزی و ویلیام دوشس بعد از مایهزنی با باکتری مولد بیماری آتشک (E. amylovora)، آزمایشی به صورت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی در سه تکرار انجام شد. ارزیابی مقاومت بر اساس درصد نسبت پیشرفت بیماری آتشک در شاخه به کل طول شاخه صورت گرفت. برخی از شاخصهای فیزیولوژیکی و بیوشیمیایی شامل آنزیمهای آسکوربات پراکسیداز (APX)، کاتالاز (CAT)، گایاکول پراکسیداز (POX)، تجمع پراکسید هیدروژن و ظرفیت کل آنتیاکسیدانی (TAC) قبل از تلقیح باکتری (زمان صفر) و سه، شش، 9، 12 و 15 روز بعد از مایهزنی با باکتری مولد بیماری آتشک به منظور تعیین نقش آنها در مکانیزم مقاومت بعد از حملهی پاتوژن اندازهگیری شدند. نتایج نشان داد کلیهی پارامترهای بیوشیمیایی تحت تاثیر حملهی پاتوژن قرار گرفتند. بیشتر پارامترهای بیوشیمیایی در رقم درگزی در مقایسه با رقم ویلیام دوشس، بعد از حملهی پاتوژن افزایش معنیداری نشان دادند. فعالیت آنزیمهای کاتالاز و پراکسیداز در رقم درگزی اختلاف معنیداری در سطح یک درصد با رقم ویلیام دوشس در طول دورهی تلقیح داشت و در روزهای ششم تا دوازدهم بعد از تلقیح به حداکثر مقدار رسید. بررسی پیشرفت بیماری در سرشاخهها نشان داد سرعت پیشرفت نکروز در سرشاخهی گلابی در ارتباط با شاخص حساسیت رقم بود به طوریکه رقم ویلیام دوشس با شاخص حساسیت بیشتر، دارای سرعت نکروز بالاتری بود. | ||
کلیدواژهها | ||
واژه های کلیدی: گلابی؛ آنزیم؛ شاخص های بیوشیمیایی؛ کاتالاز؛ پراکسید هیدروژن | ||
مراجع | ||
داودی ع، مجیدی ا، رحیمیان ح و ولیزاده م، 1384. بررسی شدت آلودگی ارقام گلابی به بیماری آتشک با استفاده از سیستم استاندارد USDA. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی، سال 9، شماره 2. صفحههای 168-159. عرفانی ج، عبداللهی ح، عبادی ع و فتاحی مقدم م، 1392. ارزیابی مقاومت به بیماری آتشک و نشانگرهای وابسته به آن در برخی ارقام گلابی اروپایی و آسیایی. مجله بهنژادی نهال و بذر، جلد 29، شماره 4. صفحههای 672-659. Abdollahi H, Rugini E, Ruzzi M and Muleo R, 2004. In vitro system for studying the interaction between Erwiniaamylovora and genotypes of pear. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 79: 203-212. Alexieva V, Sergiev I, Mapelli S and Karanov E, 2001. The effect of drought and ultraviolet radiation on growth and stress markers in pea and wheat. Plant, Cell & Environment 24: 1337-1344. Ashry NA and Mohamed HI, 2011. Impact of secondary metabolites and related enzymes in flax resistance and or susceptibility to Powdery mildew. World Journal of Agricultural Sciences 7: 78-85. Bandeoglu E, Eyidogan F, Yucel M and Oktem HA, 2004. Antioxidant responses of shoots and roots of lentil to NaCl-salinity stress. Plant Growth Regulation 42: 69-77. Bell AC, Ranney TG, Eaker TA and Sutton TB, 2004. Resistance to fire blight among flowering pears and quince. HortScience 40: 413-415. Bent AF, 1996. Plant disease resistance genes: function meets structure. The Plant Cell 8: 1757-1771. Bradford MM, 1976. A rapid and sensitive method for quantitation of microgram of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254. Dhindsa RS and Motowe W, 1981. Drought tolerance in two mosses: correlation with enzymatic defense against lipid peroxidation. Journal of Experimental Botany 32: 79-91. Diby P and Sharma YR, 2005. Pseudomonas fluorescens mediated systematic resistance in black pepper (Piper nigrum L.) is driven through an elevated synthesis of defense enzymes. Archives of Phytopathology and Plant Protection 38: 139-149. Doke N, 1997. The oxidative burst: roles in signal transduction and plant stress. Cold Spring Harbor Monograph Archive 34: 785-813. Durner J, Shah J and Klessig DF, 1997. Salicylic acid and disease resistance in plants. Trends in Plant Science 2: 266-274. Fu J and Huang B, 2001. Involvement of antioxidants and lipid peroxidation in the adaptation of two cool-season grasses to localized drought stress. Environmental and Experimental Botany 45: 105-114. Hammerschmidt R and Nicholson RL, 1999. A survey of plant defense responses to pathogens. Pp. 55-71 In: Agrawal AA, Tuzun S, Bent E (eds): Induced Plant Defenses against Pathogens and Herbivores: Biochemistry, Ecology, and Agriculture. The American Phytopathological Society Press, St. Paul. Hammond-Kosack KE and Jones JD, 1996. Resistance gene-dependent plant defense responses. The Plant Cell 8: 1773-1791. Kampfenkel K, Van Montagu M and Inze D, 1995. Effects of iron excess on Nicotiana plumbaginifolia plants (implications to oxidative stress). Plant Physiology 107: 725-735. Khanna-Chopra R and Selote DS, 2007. Acclimation to drought stress generates oxidative stress tolerance in drought-resistant than-susceptible wheat cultivar under field conditions. Environmental and Experimental Botany 60: 276-283. Korba J and Kudela V, 2004. Evaluation of the fire blight susceptibility of pear genotypes following inoculation. Acta Fytotechnica et Zootechnica 7: 144-146. Korba J, Sillerova J and Kudela V, 2008. Resistance of apple varieties and selections to Erwinia amylovora in the Czech Republic. Plant Protect Science 44: 91-96. Kovtun Y, Chiu WL, Tena G and Sheen J, 2000. Functional analysis of oxidative stress-activated mitogen-activated protein kinase cascade in plants. Proceedings of the National Academy of Sciences 97: 2940-2945. Lim YS, Cha MK, Kim HK, Uhm TB, Park JW, Kim K and Kim IH, 1993. Removals of hydrogen peroxide and hydroxyl radical by thiol-specific antioxidant protein as a possible role in vivo. Biochemical and Biophysical Research Communications 192: 273-280. McKersie BD and Leshem Y, 1994. Stress and stress coping in cultivated plants. Springer Science and Business Media. Mittler R, 2002. Oxidative stress, antioxidants and stress tolerance. Trends in Plant Science 7: 405–410. Mittova V, Volokita M, Guy M and Tal M, 2000. Activities of SOD and the ascorbate-glutathione cycle enzymes in subcellular compartments in leaves and roots of the cultivated tomato and its wild salt tolerant relative Lycopersi conpennellii. Physiology Plant 110: 42-51. Moon JH and Terao J, 1998. Antioxidant activity of caffeic acid and dihydrocaffeic acid in lard and human low density lipoprotein. Journal of Agriculture and Food Chemistry 46: 5062-5065. Nakano Y and Asado K, 1981. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts. Plant Cell Physiology 22: 867-880. Niebel A, Heungens K, Barthels N, Inze D, Van Montagu M and Gheysen G, 1995. Characterization of a pathogen-induced potato catalase and its systemic expression upon nematode and bacterial infection. Molecular Plant-Microbe Interactions 8: 371-378. Noctor G and Foyer CH, 1998. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control. Physiology and Molecular Biology of Plants 49: 249-279. Parida AK and Das AB, 2005. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. Ecotox Environ Safe 60: 324-349. Plewa MJ, Smith SR and Wanger ED, 1991. Diethyl dithiocarbamate suppresses the plant activation of aromatic amines into mutagens by inhibiting tobacco cell peroxidase. Mutant Research 247: 57-64. Rezai K and Farboodnia T, 2008. Manganese toxicity effects on chlorophyll content antioxidant enzymes in pea plant (Pisum sativum L. cv qazvin). Agricultural Journal 3: 454-458. Sgherri CLM, Maffei M and Navari-Izzo F, 2000. Antioxidative enzymes in wheat subjected to increasing water deficit and rewatering. Journal of Plant Physiology 157: 273-279. Somssich IE and Hahlbrock K, 1998. Pathogen defence in plants - a paradigm of biological complexity. Trends in Plant Science 3: 86-90. Staskawicz BJ, Ausubel FM, Baker BJ, Ellis JG and Jones JD, 1995. Molecular genetics of plant disease resistance. Science 268: 661-661. Tenhaken R, Levine A, Brisson LF, Dixon RA and Lamb C, 1995. Function of the oxidative burst in hypersensitive disease resistance. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 92: 4158-4163. Van Loon LC, Rep M and Pieterse CMJ, 2006. Significance of inducible defense-related proteins in infected plants. Annual Review of Phytopathology 44: 135-162. Vander-Zwet T and Keil HL, 1979. Fire blight: a bacterial disease of rosaceous plants. U.S.D.A. Handbook. Vanneste JL (eds), 2000. Fire blight. The disease and its causative agent, Erwinia amylovora. CABI Pub., Wallingford, UK. Venisse JS, Gullner G and Brisset MN, 2001. Evidence for the involvement of an oxidative stress in the initiation of infection of pear by Erwinia amylovora. Plant Physiology 125: 2164-2172. Venisse JS, Malnoy M, Faize M, Paulin JP and Brisset MN, 2002. Modulation of defense responses of Malus spp. during compatible and incompatible interactions with Erwinia amylovora. Molecular Plant-Microbe Interactions 15: 1204-1212. Zhang J and Kirkham MB, 1996. Enzymatic responses of the ascorbate-glutathione cycle to drought in sorghum and sunflower. Plant Science 113: 139-147.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 890 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 678 |