تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,304 |
تعداد مقالات | 15,960 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,306,577 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,067,708 |
ارزیابی میزان ترکیبات فنولی، فلاونوئیدی و فعالیت آنتی اکسیدانی عصاره آبی و الکلی میوه نسترن وحشی (Rosa canina L.) شمال ایران | ||
پژوهش های صنایع غذایی | ||
مقاله 6، دوره 27، شماره 3، مهر 1396، صفحه 65-76 اصل مقاله (1.18 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
سمیه رضایی ارمی؛ زینب رفتنی امیری* | ||
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده مهندسی زراعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری | ||
چکیده | ||
امروزه به علت اثرات منفی آنتیاکسیدانهای سنتزی، صنعت غذا توجه بیشتری به آنتیاکسیدانهای طبیعی کرده است. در این پژوهش ترکیبات فنولی میوه نسترن وحشی (Rosa canina L.) بعنوان منبع طبیعی آنتیاکسیدان، با سه حلال متانول 80%، اتانول 50% و آب در سه بازه زمانی 6، 12 و 24 ساعت استخراج شد و سپس میزان ترکیبات فنولی کل توسط روش فولین سیوکالتو و میزان ترکیبات فلاونوئیدی آن تعیین گردید. همچنین فعالیت آنتیاکسیدانی عصارهها با سه روش آزمون مهارکنندگی رادیکال آزاد DPPH (دی فنیل پیکرو هیدرازیل)، آزمون قدرت احیاکنندگی و فعالیت آنتیاکسیدانی کل در غلظتهای مختلف بررسی و با آنتیاکسیدانهای سنتزی BHA و BHT مقایسه شد. نتایج این پژوهش نشان داد که تاثیر نوع حلال بر میزان استخراج معنیدار بوده و بالاترین میزان ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی مربوط به عصاره متانولی 80% بود. همچنین با افزایش زمان استخراج میزان ترکیبات فنولی افزایش یافت. عصاره متانولی بیشترین میزان ترکیبات فنولی (80/ 7 ± 29 /235 میلیگرم گالیک اسید بر گرم عصاره خ) و فلاونوئیدی (21/ 0 ± 00 /14 میلیگرم کوئرستین بر گرم عصاره) را داشت. کمترین IC50 در آزمون مهار رادیکال DPPH (06/48 میلیگرم بر میلیلیتر)، قدرت احیاکنندگی (00/73) و آنتی اکسیدانی کل (72/218 میلیگرم بر میلیلیتر) مربوط به عصاره متانولی بوده است که در اکثر موارد فعالیت بالاتری نسبت به آنتیاکسیدان سنتزی BHA داشتند. فعالیت آنتیاکسیدانی در عصارهها وابسته به غلظت بود. نتایج این پژوهش نشان داد میوه نسترن کوهی به عنوان منبع غنی از ترکیبات فنولی و فلاونوئیدی است. با اینحال مطالعه بیشتر جهت بهرهگیری از آن به عنوان یک نگهدارنده در سیستمهای غذایی توصیه میگردد. | ||
کلیدواژهها | ||
رکیبات فنولی؛ ترکیبات فلاونوئیدی؛ عصاره؛ فعالیت آنتیاکسیدانی؛ نسترن وحشی | ||
مراجع | ||
مظفریان و، 1385، فرهنگ نامهای گیاهان ایران، جلد دوم، چاپ چهارم، فرهنگ معاصر، موسسه انتشارات امیرکبیر، تهران، ص 462. Arabshahi-Delouee S and Urooj A, 2007. Antioxidant properties of various solvent extracts of mulberry (Morus indica L.) leaves. Food Chemistry 102: 1233-1240.
Ariana B, Konstantina K, Georgios P, Vasiliki L, Aliannis N, Magdalini K and Kostis M, 2015. Evaluation of total antioxidant potential of Pistacia lentiscus var. chia leaves extracts using UHPLC-HRMS. Journal of Food Engineering 167: 25-31.
Asghari B, Salehi P, Farimani MM and Nejad Ebrahimi S, 2015. α-Glucosidase Inhibitors from Fruits of Rosa canina L. Records of Natural Products 9:276-283.
Chang C, Yang M, Wen H and Chern J, 2002. Estimation of Total Flavonoid Content in Propolis by Two Complementary Colorimetric Methods. Food and Drug Analysis 10: 178-82.
Chekroun E, Benariba N, Adida H, Bechiri A, Azzi R and Djaziri R, 2015. Antioxidant activity and phytochemical screening of two Cucurbitaceae: Citrullus colocynthis fruits and Bryonia dioica roots. Asian Pacific Journalof Tropical Disease 5:632-637.
Chirinos R, Rogez H, Campos D, Pedreschi R and Larondelle Y, 2007. Optimization of extraction conditions of antioxidant phenolic compounds from mashua (Tropaeolum tuberosum Ruiz and Pavon) tubers. Separation and Purification Technology 55: 217-225.
Demir F and Ozcan M, 2001. Chemical and technological properties of rose (Rosa canina L.) fruits grown wild in Turkey. Journal of Food Engineering 47: 333 – 336.
Ersoy E, Bagci Y, Zenginbal H, Ozen SM and Elidemir AY, 2015. Antioxidant properties of Rosehip fruit types (Rosa canina sp.) selected from Bolu-Turkey. International Journal of Science and Knowledge 4: 51-59.
Gao H, Cheng N, Zhou J, Wang B, Deng J and Cao W, 2014. Antioxidant activities and phenolic compounds of date plum persimmon (Diospyros lotus L.) fruits. Journal of food science and technology 51: 950-956. Li J, Zu YG, Fu YJ, Yang YC, Li SM, Li ZN and Wink M, 2010. Optimization of microwave-assisted extraction of triterpene saponins from defatted residue of yellow horn (Xanthoceras sorbifolia Bunge.) kernel and evaluation of its antioxidant activity. Innovative Food Science & Emerging Technologies 11: 637-643.
Li JW, Ding SD and Ding XL, 2005. Comparison of antioxidant capacities of extracts from five cultivars of Chinese jujube. Process Biochemistry 40: 3607-3613.
Mohsen S.M and Ammar ASM, 2009. Total phenolic contents and antioxidant activity of corn tassel extracts. Food Chemistry 112: 595–598.
Morais DR, Rotta EM, Sargi SC, Schmidt EM, Bonafe EG, Eberlin MN, Sawaya AC and Visentainer JV, 2015. Antioxidant activity, phenolics and UPLC–ESI–MS of extracts from different tropical fruits parts and processed peels. Food Research International 77: 392-399.
Nadpal JD, Lesjak MM, Šibul FS, Anacˇkov GT, Cˇ etojevic´-Simin DD, Mimica-Dukic´NM and Beara IN, 2016. Comparative study of biological activities and phytochemical composition of two rose hips and their preserves: Rosa canina L. and Rosa arvensis Huds 192: 907-914.
Naidu MM, Sulochannamma G, Sampathu SR and Srinivas P, 2008. Studies on extraction and antioxidant potential of green coffee. Food Chemistry 107: 377-384.
Prieto P, Pineda M and Aguilar M, 1999. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin E. Analytical Biochemistry 269: 337-341.
Roman I, Stănilă A and Stănilă S, 2013. Bioactive compounds and antioxidant activity of Rosa canina L. biotypes from spontaneous flora of Transylvania. Chemistry Central Journal 7:73.
Rumbaoa RGO, Cornago DF and Geronimo IM, 2009. Phenolic content and antioxidant capacity of Philippine potato (Solanum tuberosum) tubers. Journal of Food Composition and Analysis 22: 546-550.
Sanchez-Moreno C, Larrauri JA and Saura-Calixto F, 1999. Free radical scavenging capacity and inhibition of lipid oxidation of wines, grape juices and related polyphenolic constituents. Food Research International 32:407–412.
Sharma k, PasrichaY, Satpathy G and Gupta RK, 2015. Evaluation of phytochemical and antioxidant activity of raw Pyrus communis (l), an underexploited fruit. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry 3: 46-50.
Sing R and Kumari N, 2015. Comparative determination of phytochemicals and antioxidant activity from leaf and fruit of Sapindus mukorrossi Gaertn. – Avaluable medicinal tree. Industrial Crops and Products 73: 1–8.
Spigno G, Tramelli L and De Faveri DM, 2007. Effects of extraction time, temperature and solvent on concentration and antioxidant activity of grape marc phenolics. Journal of Food Engineering 81: 200-208.
Srikanth M, Swamy TR, Rao TM and Rao G, 2013. Abortifacient and antioxidant activities of different extracts of Musa rosacea. Asian Pacific Journal of Reproduction 2 :174-177.
Suzuki M, Watanabe T, Miura A, Harashima E, Nakagawa Y and Tsuji K, 2002. An extraction solvent optimum for analyzing polyphenol contents by Folin-Denis assay. Nippon Shokuhin Kagaku Kaishi 49: 507-511.
Tlili N, Mejri H, Anouer F, Saadaoui E, Khaldi K and Nasri N, 2015. Phenolic profile and antioxidant activity of Capparis spinosa seedsharvested from different wild habitatsNizar. Industrial Crops and Products 76: 930–935.
Tlili N, Mejri H, Yahia YM, Anouer F, Saadaoui E, Rejeb S and Khaldi A, 2014. Phytochemicals and antioxidant activities of Rhus tripartitum (Ucria) fruits depending on locality and different stages of maturity. Food Chemistry 160: 98–103.
Wang J, Sun B and Cao Y, 2007. Optimisation of ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds from wheat bran. Food Chemistry 106:804–810. Ye F, Liang Q, Li H and Zhao G, 2015. Solvent effects on phenolic content, composition, and antioxidantactivity of extracts from florets of sunflower (Helianthus annuus L.). Industrial Crops and Products 76: 574–581. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,224 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,097 |