آمار
| تعداد نشریات | 44 |
| تعداد شماره‌ها | 1,303 |
| تعداد مقالات | 16,020 |
| تعداد مشاهده مقاله | 52,485,465 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,213,034 |
شناسایی گروه¬های سازگاری رویشی و دودمان¬های کلونال قارچ Fusarium solani عامل پوسیدگی ریشه لوبیا در زنجان | ||
| پژوهش های کاربردی در گیاهپزشکی | ||
| مقاله 7، دوره 2، شماره 1، بهمن 1392، صفحه 67-83 اصل مقاله (278.02 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| نویسندگان | ||
| زهرا صفرلو1؛ رقیه همتی* 2 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیماری شناسی گیاهی، گروه گیاه پزشکی، دانشگاه زنجان | ||
| 2استادیار، گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان | ||
| چکیده | ||
| گروههای سازگاری رویشی 42 جدایهFusarium solani عامل بیماری پوسیدگی ریشه لوبیا جمعآوریشده از مناطق مختلف لوبیاکاری استان زنجان، با استفاده از جهشیافتهگان nit تعیین شدند. فنوتیپ جهشیافتهگان nit بر اساس مشخصات رشدی آنها در محیط غذایی حداقل (MM) حاوی منابع مختلف نیتروژن تعیین گردید و جهشیافته nitM بیشترین فراوانی جهشیافتهها را بهخود اختصاص داد. آزمون مکملسازی و تعیین گروههای سازگاری رویشی برای جدایههای خودسازگار صورت گرفت. بر این اساس، جدایهها در 16 گروه VCG قرار گرفتند که چهار گروه از آنها تکعضوی و بقیه چندعضوی بودند. گروههای چندعضوی همچنین دربرگیرنده جدایههای متصلکننده یا پل بودند که بهطور همزمان در بیش از یک گروه قرار گرفتند. ارتباطی بین گروههای سازگاری رویشی و منطقه جغرافیایی مشاهده نگردید. جهت تعیین دودمانهای کلونال، هشت آغازگر تصادفی مورد استفاده قرار گرفتند و از بین آنها یک آغازگر (OPA-13) با تولید باندهای تکرارپذیر و چندشکلی مناسب انتخاب شد. واکنش زنجیرهای پلیمراز از بین 42 جدایه برای 26 جدایه، موفق بود و نتایج مولکولی تنوع بالای این جدایهها را نشان داد بهطوریکه آنها را در 13 دودمان کلونالی با ضریب تشابه 75 درصد گروهبندی نمود. هر دودمان کلونالی متشکل از تنها یک هاپلوتیپ یک یا چندعضوی بود. بین گروهبندی بر اساس روش مولکولی و سازگاری رویشی همبستگی بارزی مشاهده نگردید. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پوسیدگی فوزاریومی؛ ناسازگاری رویشی؛ هاپلوتیپ؛ Phaseolus vulgaris | ||
| مراجع | ||
|
بقاییراوری س، فلاحتیرستگار م، جعفرپور ب، شکوهیفر ف و مرادزاده اسکندری م، 1385. انگشت نگاری DNA جدایه های F. solaniعامل پژمردگی و پوسیدگی خشک فوزاریومی سیب زمینی در استانهای خراسان رضوی و شمالی با استفاده از نشانگرهای مولکولی مبتنی بر PCR. مجله بیماریهای گیاهی، جلدچهلودوم، صفحههای 417 تا 437. حسنزاده ف، فلاحتیرستگار م، جعفرپور ب و مرادزاده اسکندری م، 1387. بررسی چندشکلی جدایههای Fusarium solani f.sp. pisiدر مزارع نخود استان خرسان رضوی و شمالی با استفاده از نشانگر مولکولی .RAPD جلد 2- صفحه 5 خلاصه مقالات هیجدهمین کنگره گیاهپزشکی ایران، دانشگاه بوعلی سینا، همدان. رئوفی م، فرخینژاد ر و محمودی سب، 1383. مطالعه تنوع جهش در قارچ Fusarium solani، عامل پوسیدگی ریشه چغندرقند با استفاده از گروههای سازگار رویشی و رابطه آن با بیماریزایی جدایهها. مجله چغندرقند، جلد بیستم، صفحههای 39 تا 53. مرادزاده اسکندری م، جواننیکخواه م، زارع ر، اخوت سم، مورتی آ، سوما ا و استئا گ، 1388. مطالعه ساختار ژنتیکی جمعیتهای Fusarium solani، جداشده ازسیبزمینی، کدوئیان و نخود بر اساس نشانگر AFLP. مجله بیماریهای گیاهی، جلدچهلوپنجم، صفحههای 189 تا 197. مرید ب، زارع ر، زمانیزاده حر و حاجمنصور ش، 1387. بررسی تنوع ژنتیکی قارچ Fusarium solani با استفاده از نشانگرهای مولکولی PCR-RFLPs وRAPD-PCR. جلد 2- صفحه 2 خلاصه مقالات هیجدهمین کنگره گیاهپزشکی ایران، دانشگاه بوعلی سینا، همدان. محمدی ح و بنیهاشمی ض، 1385. بررسی گروههای سازگاری رویشی Fusarium solani f.sp. pisi، عامل پوسیدگی سیاه ریشه نخود در استان فارس. مجله بیماریهای گیاهی، جلد چهلودوم، صفحههای 179 تا 194. ناصری ب و مرادی پ، 1386. شیوع عوامل پوسیدگی ریشه و خسارت وارده به محصول لوبیا در زنجان، ایران (گزارش کوتاه علمی). مجله بیماریهای گیاهی، جلد چهلوسوم، صفحه 347. Achenbach LA, Patrick JA and Gray LE, 1997. Genetic homogeneity among isolates of Fusarium solani that cause soybean sudden death syndrome. Theoretical and Applied Genetics 95: 474-478.
Agapow PM and Burt A, 2001. Indices of multilocus linkage disequilibrium. Molecular Ecology Notes 1: 101– 102.
Alimanesh MR, Falahatirastegar M, Jafarpour B and Mahdikhani Moghadam E, 2009. Genetic diversity in the fungus Fusarium solani f.sp cucurbitae Race 1, the causal agent of root and crown rot of cucurbits in Iran, using molecular markers. Pakistan Journal of Biological Sciences 12: 836-843.
Alizadeh A, Javan-Nikkhah M, Fotouhifar KB, Rabiee Motlagh E and Rahjoo V, 2010. Genetic diversity of Fusarium proliferatum populations from maize, onion, rice and sugarcane in Iran based on vegetative compatibility grouping. Canadian Journal of Plant Pathology 26: 216-222.
Brasileiro BT, Coimbra MR, Morias, MA and Oliveira NT, 2004. Genetic variability within Fusarium solani species as revealed by PCR-fingerprinting based on PCR markers. Brazilian Journal of Microbiology 35: 205-210.
Correll JC, Klittich CJR and Leslie JF, 1987. Nitrate non-utilizing mutants of Fusarium oxysporum and their use in vegetative compatibility test. Phytopathology77: 1640-1646.
Douhan LI and Johnson DA, 2001. Vegetative compatibility and pathogenicity of Verticillium dahlia from spearmint and peppermint. Plant Disease 85: 297-302.
Hawthorne BT and Rees-George J, 1996. Use of nitrate non- utilizing mutants to study vegetative incompatibility in Fusarium solani (Nectria haematococca) especially members of mating populations I, V and VI. Mycological Research 100: 1075-1081.
Jacobson DJ and Gordon TR, 1988. Vegetative compatibility and self-incompatibility within Fusarium oxysporumf.sp. melonis. Phytopathology 78: 668-672.
Jana T, Sharma TR, Prasad RD and Arora DK, 2003. Molecular characterization of Macrophomina phaseolina and Fusarium species by a single primer RAPD technique. Microbiological Research 158: 249-257.
Knodel JJ, Bradly CA, Luecke, JL and Mars GA, 2007. 2004 and 2005 dry bean grower survey. External Report Notes. North Dakota State University, Fargo, ND.
Leslie JF, 1993. Fungal vegetative compatibility. Annual Review of Phytopathology31: 127-151.
Leslie JF and Summerell BA, 2006. The Fusarium laboratory manual. Blackwell Publishing Professional, Ames, USA.
Liu D, Coloe S, Baird R and Pedersen J, 2000. Rapid mini- preparation of fungal DNA for PCR. Journal of Clinical Microbiology 38: 471.
Mohammadi A and Nooras Mofrad N, 2009. Genetic diversity in populations of Fusarium solani from cumin in Iran. Journal of Plant Protection Research 49: 283-286.
Peakall R and Smouse PE, 2006. GENALEX 6: genetic analysis in excel, population genetic software for teaching and research. Molecular Ecology Notes 6: 288–295.
Puhalla JE, 1985. Classification of strains of Fusarium oxysporum on the basis of vegetative compatibility. Canadian Journal of Botany 63: 179-183.
Puhalla JE and Spieth PT, 1983. Heterokaryosis in Fusarium moniliforme. Experimantal Mycology 7: 328-335.
Rohlf FI, 1998. NTSYS-pc. Numerical taxonomy and multivariate analysis system, Version 2.0. Applied Biostatistics, New York, USA.
Romberg MK and Davis RM, 2007. Host range and phylogeny of Fusarium solani f.sp. eumartii from potato and tomato in California. PlantDisease 91: 585-592.
Sharifi K, Zare R and Rees-George J, 2008. Vegetative compatibility groups among Fusarium solani isolates causing potato dry rot. Biological Science8: 374-379.
Vakalounakis DJ and Fragkiadakis GA, 1999. Genetic diversity of Fusarium oxysporum isolates from cucumber: Differentiation by pathogenicity, vegetative compatibility and RAPD fingerprinting. Phytopathology 89: 161-168. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 3,153 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,600 |
||