تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,323 |
تعداد مقالات | 16,270 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,953,340 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,624,178 |
پایش تغییرات فعالیت آنزیمی خاک آلوده به نفتای سنگین در تیمارهای مختلف زیستپالایی | ||
دانش آب و خاک | ||
مقاله 13، دوره 34، شماره 1، فروردین 1403، صفحه 217-233 اصل مقاله (681.22 K) | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/ws.2021.48736.2448 | ||
نویسندگان | ||
مریم نوروزپور1؛ محمد رضا ساریخانی* 2؛ ناصر علی اصغر زاد3 | ||
1گروه علوم و مهندسی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
2دانشیار بیولوژی و بیوتکنولوژی خاک، گروه علوم و مهندسی خاک دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
3استاد بیولوژی و بیوتکنولوژی خاک، گروه علوم و مهندسی خاک دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
چکیده | ||
برای آگاهی از وضعیت آلودگی خاک به ترکیبات نفتی و پایش تغییرات آن، استفاده و سنجش فعالیت آنزیمی یکی از روشهای مورد توجه است. بدین منظور برای کاهش آلودگی نفتای سنگین (7%) در یک خاک لومشنی آلوده، انواع تیمارهای زیستپالایی از جمله تحریک زیستی (شامل تامین عناصر NP، افزودن کود دامی و سورفاکتانت Tween 80)، تیمار تلقیح زیستی (استفاده از کنسرسیوم باکتریهای کارآمد) و تیمار تلفیقی (شامل همه تیمارهای تحریک زیستی و تلقیح زیستی) مورد آزمایش قرار گرفت. بعد از اجرای آزمایش در زمانهای مختلف فعالیت آنزیمهای دهیدروژناز و لیپاز اندازهگیری شد. آزمایش به صورت فاکتوریل اسپلیت پلات با در نظر گرفتن 3 تکرار در گلدانهای 3 کیلوگرمی انجام شد. نتایج نشان داد در مدت زمان آزمایش، تیمارهای زیستپالایی باعث کاهش آلودگی نفتای سنگین شدند و بیشترین مقدار حذف این ماه به میزان 81% در تیمار تلفیقی به دست آمد. همچنین آلودگی، فعالیت آنزیمی خاک را تحت تأثیر قرار داد به طوری که فعالیت آنزیم دهیدروژناز و لیپاز در همه تیمارهای زیستپالایی روند کاهشی از خود نشان داد. آنزیم دهیدروژناز در تیمار کود گاوی در مدت زمان آزمایش از 67/1 به 59/0 (μg TPF/g.h) رسید و آنزیم لیپاز در تیمار تلفیقی در مدت زمان آزمایش از 82/33 به 24/26 (mU/g) رسید. از میان تیمارهای زیستپالایی، تیمار کود گاوی و تیمار تلفیقی نسبت به تیمار تحریکزیستی و تلقیحزیستی تأثیر بیشتری در حذف آلودگی نفتای سنگین داشتند. بکارگیری تیمارهای فوق با فراهمسازی شرایط بهینه غذائی، رطوبتی و تهویهای ضمن تشدید فعالیت میکروارگانیسمهای بومی خاک قادر به حذف بیشتر نفتای سنگین بودند. | ||
کلیدواژهها | ||
تحریکزیستی؛ دهیدروژناز؛ زیستپالایی؛ لیپاز؛ نفتای سنگین | ||
مراجع | ||
Afsharnia M, Sarikhani MR and Zarei M, 2019. The use of Agropyron cristatum L. and tall fescue plants (Festuca arundinacea L.) inoculated with bacterial consortium and mycorrhizal-like fungi in the phytoremediation of oil-contaminated soils. Agricultural Science and Sustainable Production 29: 285-300. (In Persian with English abstract).
Afsharnia M, Sarikhani MR, Zarei M, 2022. Isolation of oil degrading bacteria from oil contaminated soil around the oil refinery and petrochemical plants of Tabriz and identification of the efficient bacteria. Water and Soil Science 10.22034/WS.2021.45023.2408 (In Persian with English abstract).
Agamuthu P, Tan YS and Fauziah SH, 2013. Bioremediation of hydrocarbon contaminated soil using selected organic wastes. Procedia Environmental Sciences 18: 694– 702.
Agarry SE and Owabor CN, 2011. Anaerobic bioremediation of marine sediment artificially contaminated with anthracene and naphthalene. Environment Technology 32: 1375-1381.
Aliasgharzad N, 2010. Laboratory Methods in Soil Biology. Translated to Farsi. Tabriz University Press.
Altgelt KH and Boduszynski M, 1993. Composition and Analysis of Heavy Petroleum Fractions. CRC Press. Boca Raton
Ball JS, Dinneen GU, Smith JR, Bailey CW and Meter RV, 1949. Composition of Colorado Shale-Oil Naphtha. Industerial and Engineering Chemistry 41: 581–587.
Cheng KY, Lai KM and Wong JWC, 2008. Effects of pig manure compost and nonionic-surfactant tween 80 on phenanthrene and pyrene removal from soil vegetated with Agropyron elongatum. Chemosphere 73: 791-797.
Christopher S, Hein P, Marsden J and Shurleff AS, 1988. Evaluation of methods 3540 (Soxhlet) and 3550 (Sonication) for evaluation of appendix IX analyses from solid samples. Pp. 523-546. S-CUBED, Report for EPA contract 68-03-33-75. Work assignment No.03SSS.
Dashti N, Ali N, Eliyas M, Khanafer M, Sorkhoh NA and Radwan SS, 2015. Most hydrocarbonoclastic bacteria in the total environment are diazotrophic, which highlights their value in the bioremediation of hydrocarbon contaminants. Microbes and Environments 30: 70-75. (In Persian with English abstract)
Ebrahimi S, Ladan Sh and Malakouti MJ, 2009. Feasibility study of monitoring of oil pollutants in soil and presentation algorithm by pollutant type. Pp. 1-10. 11th Soil Science Congress of Iran. 12-14 July, Gorgan, Iran. (In Persian with English abstract)
Gomez F and Sartaj M, 2014. Optimization of field scale biopiles for bioremediation of petroleum hydrocarbon contaminated soil at low temperature conditions by response surface methodology (RSM). International Biodeterioration and Biodegradation 89: 103–109.
Hassan Shahian M and Zeidabadinejad Z, 2017. Investigation of the effect of kerosene pollution on microbial population of desert soil and farm soil. Journal of Soil and Water Conservation Research 4: 227-241. (In Persian with English abstract)
Joseph B, Ramtekeand PW and Thomas G, 2008. Cold active microbial lipases: Some hot issues and recent developments. Biotech Advances 26: 457-470.
Kuppusamy S, Thavamani P, Venkateswarlu K, Lee YB, Naidu R and Megharaj M, 2017. Remediation approaches for polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) contaminated soils: technological constraints, emerging trends and future directions. Chemosphere 168: 944–968.
Lee S, Oh B and Kim J, 2008. Effect of various amendments on heavy mineral oil bioremediation and soil microbial activity. Bioresource Technology 99: 2578–2587.
Liu S, Guo C, Liang X, Wu F and Dang Z, 2016. Nonionic surfactants induced changes in cell characteristics and phenanthrene degradation ability of Sphingomonas sp. GY2B. Ecotoxicology and Environmental Safety 129: 210–218.
Margesin R, Walder G and Schinner F, 2000. The impact of hydrocarbon remediation (diesel oil and polycyclic aromatic hydrocarbons) on enzyme activities and microbial properties of soil. Acta Biotechnologica 20: 313-333.
Margesin R, Zimmerbauer A and Schinner F, 2000. Monitoring of bioremediation by soil biological activities. Chemosphere 40: 339–346.
Orji FA, Abiye AI and Dike EN, 2012. Laboratory scale bioremediation of petroleum hydrocarbon-polluted mangrove swamps in the Niger Delta using cow dung. International Journal of Environmental Bioremediation and Biodegradation 8:219-228.
Polyak YM, Bakina LG, Chugunova MV, Mayachkina NV, Gerasimov AO and Bure VM, 2018. Effect of remediation strategies on biological activity of oil-contaminated soil – a field study. International Biodeterioration and Biodegradation 126: 57–68.
Ramadass K, Megharaj M, Venkateswarlu K and Naidu R, 2015. Ecological implications of motor oil pollution: earthworm survival and soil health. Soil Biologhy and Biochemistry 85: 72–81.
Riffaldi R, Levi-Minzi R, Cardelli R, Palumbo S and Saviozzi A, 2006. Soil biological activities in monitoring the bioremediation of diesel oil-contaminated soil. Water Air and Soil Pollution 170:3-15.
Sakai Y, Hayatsu M and Hayano K, 2002. Use of tween 20 as a substrate for assay of lipase activity in soils. Soil Science and Plant Nutrition 48: 729-734.
Sarikhani MR, Khoshru B, and Greiner R. 2019. Isolation and identification of temperature tolerant phosphate solubilizing bacteria as a potential microbial fertilizer. World Journal of Microbiology and Biotechnology 35:126.
Shen W, Zhu N, Cui J, Wang H, Dang Z, Wu P, Luo Y and Shi C, 2016. Ecotoxicity monitoring and bioindicator screening of oil-contaminated soil during bioremediation. Ecotoxicology and Environmental Safety 124:120–128.
Silva-Castro GA, Uad I, Rodríguez-Calvo A, González-López J and Calvo C, 2015. Response of autochthonous microbiota of diesel polluted soils to land-farming treatments. Environmental Research 137:49–58.
Tan T and Yin C, 2003. The mechanism and kinetic model for glycerolysis by 1, 3 position specific lipase from Rhizopus arrhizus. Biochemistry Engineering Journals 25: 39–45.
Varjani SJ and Upasani VN, 2017. A new look on factors affecting microbial degradation of petroleum hydrocarbon pollutants. International Biodeterioration and Biodegradation 120: 71–83.
Wu M, Dick WA, Li W, Wang X, Yang Q, Wang T, Xu L, Zhang M and Chen L, 2016. Bioaugmentation and biostimulation of hydrocarbon degradation and the microbial community in a petroleum-contaminated soil. International Biodeterioration and Biodegradation 107: 158–164.
Wu M, Ye X, Chen K, Li W, Yuan J and Jiang X, 2017. Bacterial community shift and hydrocarbon transformation during bioremediation of short-term petroleum-contaminated soil. Environmental Pollution 223: 657-664.
Yu S, Li S, Tang Y and Wu X, 2011. Succession of bacterial community along with the removal of heavy crude oil pollutants by multiple biostimulation treatments in the Yellow River Delta, China. Journal of Environmental Science 23: 1533–1543. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 268 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 166 |