تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,300 |
تعداد مقالات | 15,998 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,429,255 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,173,752 |
اثر آنتیاکسیدانی سیلیمارین بر یکپارچگی غشایپلاسمایی، زندهمانی و تحرک اسپرم منجمد قوچ قزل | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
دوره 32، شماره 2، شهریور 1401، صفحه 95-105 اصل مقاله (474.84 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2022.30997.1469 | ||
نویسندگان | ||
مینا بهنام1؛ غلامعلی مقدم* 2؛ حسین دقیق کیا1؛ بابک قاسمی پناهی1؛ سحر ناطق3 | ||
1گروه علوم دامی دانشگاه تبریز | ||
2استاد دانشکده کشاورزی | ||
3دانشجوی کارشناسی ارشد علوم دامی | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: تحقیقات اخیر نشان داده که گونههای فعال اکسیژن در تنظیم فعالیت فیزیولوژیک اسپرم نقش دارد. طی حفاظت انجمادی ، اسپرم در معرض شوک سرمایی و فشاراسمزی قرارمیگیرد. سیلیمارین ماده موثره عصاره گیاه خارمریم به عنوان یک آنتیاکسیدان قوی قابلیت مهار استرس اکسیداتیو را دارد. هدف: این پژوهش با هدف بررسی اثر سیلیمارین بر ذخیرهسازی اسپرم قوچ انجام شد. مواد و روشها: جمعآوری منی دوبار در هر هفته از 4 راس قوچ نژاد قزل خالص از هر قوچ 6 بار اسپرمگیری صورت گرفت. منی جمعآوری شده با رقیقکننده ی بدون آنتیاکسیدان (شاهد) و سیلیمارین 5 و 10 میکروگرم در میلیلیتر مخلوط شده و پس از سردسازی به مدت 90 دقیقه در یخچال و رسیدن به دمای 5 درجه سانتیگراد، به مدت 10-8 دقیقه در 4 سانتیمتری بالای سطح نیتروژن مایع قرار گرفت و سپس در داخل نتیروژن مایع غوطهور گردید. خصوصیات کیفی اسپرم شامل زندهمانی، حرکت کل، حرکت-پیشرونده، یکپارچگی غشای پلاسمایی در روزهای صفر، 15، 30 آزمایش بررسی شد. نتایج: یافته های آزمایش نشان داد که رقیقکنندههای حاوی سطوح محتلف سیلیمارین نسبت به گروه شاهد به طور معنیدار باعث افزایش حرکت کل، حرکت پیشرونده، زندهمانی اسپرم قوچ پس از فرایند انجماد-یخگشایی شدند. افزودن غلظتهای مختلف سیلیمارین به ترتیب 5 و 10 میکروگرم با میانگین 45/74 و 33/67 درصد در مقایسه با گروه کنترل باعث افزایش معنیدار تحرک کلی اسپرم با میانگین 07/68 و 95/60 درصد باعث افزایش معنیدار تحرک پیشرونده اسپرم منجمد قوچ پس از یخ-گشایی شدند (01/0 p<). با توجه به نتایج به دست آمده حرکت درجا در گروه شاهد (92/0 ± 92/5) نسبت به سطح 5 و 10میکروگرم سیلیمارین به ترتیب، ( 92/0± 38/6) و( 92/0± 31/8) کمترین مقدار،ولی معنیدار نبود. نتیجه نهایی: افزودن 5میکروگرم سیلیمارین به رقیقکننده انجماد اسپرم قوچ موجب بهبود پارامترهای کیفیتی اسپرم ازجمله تحرک، زندهمانی و تست هاست پس از یخگشایی شد | ||
کلیدواژهها | ||
سیلیمارین؛ آنتیاکسیدان؛ انجماد؛ اسپرم؛ قوچ | ||
مراجع | ||
Ahmadi Hamedani M, Jafari Ahangari Y and Zerehdaran S, 2014. Effect of Different Levels of Egg Yolk on Tris Dilution in Sperm Cow's Rat Quality in Cooling and Freezing Conditions. Journal of Animal Production Research 5(10)122-134.
Ahmadi Hamedani M, Tahmasebi A, Nasserian A and Jafari Bohrani, 2016. Effect of vitamin B12 in Tris based diluent on the protection of sperm rams. Journal of Research in Ruminants 4(3)73-92.
Aitken J and Fisher H, 1994. Reactive oxygen species generation and human spermatozoa: the balance of benefit and risk. Bioassays16: 259-267.
Alfati Karjei R, Daghigh kia H, Moghadam Gh, Hossein Khani A and Alijani S, 2013. Effect of Different Levels of Glutathione and Superoxide Dismutase on Some Characteristics of Cow's Sperm after Freezing. Journal of Animal and Poultry Research 1(4) 1-7.
Bailey JL, Bilodeau JF, and Cormier N, 2000. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon. Journal of Andrology 21: 1-7.
Bakhshayesh Khiabani Moghaddam G and Daghigh Kia H, 2017. Effects of adding different levels of Glutamine to modified Beltsville extender on the survival of frozen rooster semen. Animal Reproduction Science 184: 172–177.
Baumber J, Ball BA, Gravance CG, Medina V and Morel MCG, 2000.The effect of reactive oxygen species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential and membrane lipid–peroxidation. Journal of Andrology 21: 895-902.
Bilodeau JF, Chatterjee S, Sirard MA and Gagnon C. 2000. Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. Molecular Reproduction and Development 55:282–288.
Blocki Z and Daghigh kia H, 2017.Improvement of ram semen quality after the freezing- thawing process using various levels of coenzyme Q10. Journal of Animal Production 19(3) 727-738.
Chatterjee S, Lamirande E and Gagnon C, 2001. Cryopreservation alters membrane sulfhydryl status of bull spermatozoa: protection by oxidized glutathione. Molecular Reproduction and Development 60: 498–506.
Dolati Durbash P, Moghaddam G, Daghigh kia H, Taghizadeh A and Rafat A, 2015. The Effect of Different Use of Rafinose Sugar in the Maintenance of Frozen Sperm of Different Breeds of Rams in the Reproductive Period, Journal of Animal Science Research 25(2)121-132.
El Sheshtawy R, and El-Natta W, 2017. Impact of silymarin enriched semen extender on bull sperm preservability. Asian Pacific Journal of Reproduction 6(2) 81-84.
Evans G and Maxwell WMC, 1987. Handling and examination semen. In: Maxwell WMC, editor. Salamons artificial insemination of sheep and goat. Sydney: Butterworths 93-106.
Fakurazi S, Nanthini U and Hairusah I, 2008.Hepatoprotective and antioxidant action of Moringa oleifera Lam.against acetaminophen induced hepatotoxicity in rats. International Journal of Pharmacology 4(4) 270-275.
Khorram Abadi F, Khodaee Motlagh M and Moradi M, 2017. Investigating the addition of selenium nanoparticles in semen diluent in the laboratory on sperm parameters after freezing ram Farahani. Journal of Zoology Research 30(3)301-307
Kvasnicka f, Biba B, sevcik R, Voldrich M and Karta J, 2003. Analysis of the active components of silymarin. Journal of Chromatography A, 990: 239–245
Luangpiromn A, Junaimuang T, Kourchampa W, Somsapt P and Sritragoo O, 2013. Protective effect of pomegranate (Punica granatum Linn.) ice against hepatotoxicity and testicular toxicity induced by ethanol in mice. Animal Biology and Animal Husbandry 5(1)15-19
Medeiros CMO, Forell F, Oliveira ATD and Rodrigues JL, 2002. Current status of sperm cryopreservation: why isn't it better?. Theriogenology 57(1) 327-344.
Mohammadi N, Moghadam Gh, Daghigh kia H, Javanmard A, 2017. Protecting mitochondrial function during the process of freezing of sperm. Age of Life Publishing.
Momeni H , Sepehri H and Yousefi M, 2014. The effect of silymarin on plasma membranes and acrosome of treated sperm with aluminum chloride. Journal of Arak University of Medical Sciences 18(4) 80-71.
Momeni H., Sepehri H andYousefi M. 2015. The effect of silymarin on plasma membrane and acrosome of aluminum chloride treated sperm, Journal of Arak University of Medical Sciences 4:71-80.
Momeni H., Khavari A, Khodaei motlaq M, Chobinh T and Eskandari N,2014. The role of Silymarin on survival, mobility and integrity of cadmium chlorid treated sperm acrosomes, Iranian Journal of Animal Science Researches 9(4)498-506.
Parisuj P, 2013. Effect of different amounts of silymarin and caproic acid on storage of ram sperm at 5 ° C. End of letter. Gilan University.
Salamon S and Maxwell WMC, 2000. Storage of ram semen. Animal Reproduction Science 62(1) 77-111.
Sariozhan S, Bucack MN, Purhan BT, Pinnar AU and Ali B, 2009. The influence of cysteine and taurine on microscopic oxidative stress paramerters and fertilizing ability of bull semen following cryopreservation. Cryobiology, 58(2) 134-138.
Tabatabaei Vakili S, Zaidi Z, Mamoli M and Mirzadeh Kh, 2017. Investigating of different levels of glutamine aminoasid on the quality of Arabic ram semen in different storage times to 5° C. Journal of Animal Sciences 115: 233-242.
Wellington K and Jarvis B, 2001. Silymarin: A review of its clinical properties in the management of hepatic disorders. BioDrugs Journal, 15(7) 465-489.
Zamiri m, 2012. Reproductive physiology.Third edition, Haghshenas Publishing.
Ziaei Rad H, Roostaee Ali Mehr M and Mohammadi M, 2016. The effect of silymarin on cervical semen storage at 4 ° C. Journal of Animal Science Research 26(3)1-13. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 577 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 274 |