تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,486,241 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,213,435 |
اثر افزودن اسیدآمینه سیستئامین بر کاهش میزان لیپید پر اکسیداسیون اسپرم خروس رأس طی انجماد-یخگشایی | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
دوره 31، شماره 3، آذر 1400، صفحه 113-124 اصل مقاله (1.5 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2022.38408.1556 | ||
نویسندگان | ||
حسین دقیق کیا* 1؛ مهدی نظری2؛ جمیله امامی3 | ||
1دانشگاه تبریز | ||
2گروه علوم دامی | ||
3گروه علوم دامی دانشگاه تبریز | ||
چکیده | ||
آسیب غشایی بعنوان یکی از دلایل کاهش تحرک و باروری اسپرم خروس مطرح است. تاکنون آنتیاکسیدانهای مختلفی جهت کاهش یا جلوگیری از آسیبهای غشایی در حین انجماد و ذوب مورداستفاده قرارگرفته است. هدف: در این تحقیق از اسیدآمینه سیستئامین بمنظور کاهش استرس اکسیداتیو، پراکسیداسیون لیپیدی و بهبود عملکرد اسپرم طیور استفاده شد. روش کار: بدین منظور نمونههای منی از 15 خروس نژاد رأس با سن 28 هفته به روش مالش پشتی-شکمی جمعآوری شدند. نمونههای منی پس از ارزیابی اولیه باهم مخلوط شده پس از رقیقسازی نمونهها و افزودن سطوح مختلفی از اسیدآمینه سیستئامین، نمونهها سردسازی شده و سپس فریز شدند. بعد از ذوب نمونهها فراسنجههای حرکتی اسپرم با استفاده از سیستم آنالیز کامپیوتری اسپرمCASA، زندهمانی با استفاده از روش رنگآمیزی ائوزین-نیگروزین، یکپارچگی غشاء با استفاده از آزمون هاست، میزان اسپرمهای ناهنجار با استفاده از محیط هانکوک و میزان لیپید پراکسیداسیون اندازهگیری شدند. نتایج بر اساس نتایج بدستآمده افزودن سطوح 30 و 45 میکرومول باعث افزایش تحرک کل نسبت به گروه کنترل گردید. افزودن سطح 45 میکرومول باعث افزایش تحرک پیشرونده و پارامترهای حرکتی و همچنین افزودن 30 میکرومول باعث افزایش معنیدار میزان زندهمانی، سلامت غشاء و کاهش معنیدار میزان مالوندیآلدهید نسبت به گروه کنترل شد. افزودن اسیدآمینه سیستئامین باعث کاهش معنیدار اسپرمهای با مورفولوژی ناسالم طی انجماد-یخگشایی نشد. افزایش تحرک پیشرونده و پارامترهای حرکتی و همچنین افزودن 30 میکرومول باعث افزایش معنیدار میزان زندهمانی، سلامت غشاء و کاهش معنیدار میزان مالوندیآلدهید نسبت به گروه کنترل شد. افزودن اسیدآمینه سیستئامین باعث کاهش معنیدار اسپرمهای با مورفولوژی ناسالم طی انجماد-یخگشایی نشده است. | ||
کلیدواژهها | ||
آنتیاکسیدان؛ اسپرم؛ سیستئامین؛ تنش اکسیداتیو؛ مالوندیآلدهید | ||
مراجع | ||
Almasi S, Rezvanjoo B, Shirazibeheshtiha SH , Namvaran AbbasAbad A and khosravi M, 2014. Protective Effect of Coenzyme Q10 and Vitamin C on Cysteamine Induced Lipid Peroxidation. Journal of Veterinary Clinical Research 5(1): 21-29.
Amini MR, Kohram H, Shahaneh AZ, Zhandi M, Sharideh H and Nabi MM, 2015. The effects of different levels of vitamin E and vitamin C in modified Beltsville extender on rooster post-thawed sperm quality. Cell and Tissue Banking 16(4): 587-592.
Bailey JL, Blodeau JF and Cormier N, 2000. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon minireview. Journal of Andrology 21(1): 1-7.
Ball B, Medina V, Gravance C , and Baumber, J. 2001. Effect of antioxidants on preservation of motility, viability and acrosomal integrity of equine spermatozoa during storage at 5 C. Theriogenology 56: 577-589.
Bansal AK and Bilaspuri G, 2011. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Veterinary Medicine International 2011:112-127.
Besouw M, Masereeuw R, Van den Heuvel L and Levtchenko E, 2013. Cysteamine: an old drug with new potential. Drug Discovery Today 18(15-16): 785-792.
Blesbois E, 2011. Freezing avian semen. Avian Biology Research 4(2): 52-58.
Blesbois E, Lessire M, Grasseau I, Hallouis J and Hermier D, 1997.Effect of dietary fat on the fatty acid composition and fertilizing ability of fowl semen. Biology of Reproduction 56(5): 1216-1220.
Breque C, Surai P and Brillard JP. 2003. Roles of antioxidants on prolonged storage avian spermatozoa in vivo and in vitro. Molecular Reproduction and Development 66: 314–323.
Bucak MN, Ateşşahin A, Varışlı Ö, Yüce A, Tekin N and Akçay A, 2007. The influence of trehalose, taurine, cysteamine and hyaluronan on ram semen: microscopic and oxidative stress parameters after freeze–thawing process. Theriogenology 67(5): 1060-1067.
Bucak MN, Sarıözkan S, Tuncer PB, Ulutaş PA and Akçadağ Hİ, 2009. Effect of antioxidants on microscopic semen parameters, lipid peroxidation and antioxidant activities in Angora goat semen following cryopreservation. Small Ruminant Research 81(2-3): 90-95.
Chatterjee S and Gagnon C, 2001. Production of reactive oxygen species by spermatozoa undergoing cooling, freezing, and thawing. Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research 59(4): 451-458.
Chowdhury M, Park J, Afrin F, Ko YG, Kim CL, Lee SS and Kim, SW, 2020. Transcriptome profiling of in vitro-matured oocytes from a korean native cow (hanwoo) after cysteamine supplementation. Animal Biotechnology 1-12.
Ishii T, Bannai S and Sugita Y, 1981. Mechanism of growth stimulation of L1210 cells by 2-mercaptoethanol in vitro. Role of the mixed disulfide of 2-mercaptoethanol and cysteine. Journal of Biological Chemistry 256(23): 12387-12392.
Esterbauer H and Cheeseman KH, 1990. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods Enzymol 186: 407–421.
Evans G, 1987. Handling and examination of semen. Salamon's Artificial Insemination of Sheep and Goats 93-106.
Hancock JL, 1956. The morphology of boar spermatozoa. Journal of the Royal Microscopical Society 76: 84-97.
Issa Layali ET, Joulaei M, Jorsaraei SGA and Farzanegi P, 2015. Total antioxidant capacity and lipid peroxidation in semen of patient with hyperviscosity. Cell Journal (Yakhteh) 16(4): 554.
Masoudi R, Sharafi M. and Pourazadi L, 2019. Improvement of rooster semen quality using coenzyme Q10 during cooling storage in the Lake extender. Cryobiology 88: 87-91.
Mehdipour M. and Daghigh Kia H, 2019. Improving Rooster Sperm Quality by Adding Different Levels of Naringenin after Freezing-Thawing Process. Research on Animal Production 10(25): 61-68. (in persian)
Najafi A, Daghigh Kia H, Mohammadi H, Najafi MH , Zanganeh Z, Sharafi M, Martinez-Pastor F and Adeldust H, 2014. Different concentrations of cysteamine and ergothioneine improve microscopic and oxidative parameters in ram semen frozen with a soybean lecithin extender. Cryobiology 69(1): 68-73.
Najafi A, Taheri RA, Mehdipour M, Martínez-Pastor F, Rouhollahi AA and Nourani MR, 2019. Improvement of post-thawed sperm quality in broiler breeder roosters by ellagic acid-loaded liposomes. Poultry Science 98(1): 440-446.
Daghigh Kia H and Nazari M, 2020. Effect of combination of MitoQ as a targeted antioxidant and Pentoxifylline as a non-targeted in Lake based extender on functional quality of rooster sperm during chilled storage on 4◦C. Journal of Animal Science Research 30(3):71-83. (in persian)
Nguyen TMD, Seigneurin F , Froment P, Combarnous Y and Blesbois E, 2015. The 5’-AMP-activated protein kinase (AMPK) is involved in the augmentation of antioxidant defenses in cryopreserved chicken sperm. PloS One 10(7):13-25.
Partyka A, Niżański W, Bajzert J , Łukaszewicz E and Ochota M, 2013. The effect of cysteine and superoxide dismutase on the quality of post-thawed chicken sperm. Cryobiology 67(2): 132-136.
Revell SG and Mrode RA, 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science 36: 77-86.
Safa, S, Moghaddam G, Jozani RJ, daghigh Kia H and Janmohammadi H, 2016. Effect of vitamin E and selenium nanoparticles on post-thaw variables and oxidative status of rooster semen. Animal Reproduction Science 174: 100-106.
Sarıözkan S, Tuncer PB, Büyükleblebici S , Bucak MN, Cantürk F and Eken A, 2015. Antioxidative effects of cysteamine, hyaluronan and fetuin on post‐thaw semen quality, DNA integrity and oxidative stress parameters in the B rown S wiss bull. Andrologia, 47(2): 138-147.
Seifi-Jamadi A, Kohram H, Zareh-Shahne A , Dehghanizadeh P and Ahmad E, 2016. Effect of various concentrations of butylated hydroxyanisole and butylated hydroxytoluene on freezing capacity of Turkman stallion sperm. Animal Reproduction Science 170:108-113.
Surai PF, Cerolini S, Wishart GJ, Speake BK, Noble R and Sparks NH, 1998. Lipid and antioxidant composition of chicken semen and its susceptibility to peroxidation. Avian and Poultry Biology Reviews 9:11-23.
Swami DS, Kumar P, Malik R, Saini M, Kumar D and Jan M, 2017. Cysteamine supplementation revealed detrimental effect on cryosurvival of buffalo sperm based on computer-assisted semen analysis and oxidative parameters. Animal Reproduction Science 177:56-64.
Tatone C, Di Emidio G , Vento M, Ciriminna R and Artini, P. G, 2010. Cryopreservation and oxidative stress in reproductive cells. Gynecological Endocrinology 26: 563-567.
Thananurak P, Chuaychu-noo N and Vongpralub T, 2017. Freezability and fertility of Thai native chicken semen in different diluents. The Thai Journal of Veterinary Medicine 47(4): 551-556.
Thananurak P, Chuaychu-noo N, Thélie A , Phasuk Y , Vongpralub T and Blesbois E, 2019. Different concentrations of cysteamine, ergothioneine, and serine modulate quality and fertilizing ability of cryopreserved chicken sperm. Poultry Science 99:1185-1198
Tuncer PB, Bucak MN, Sarıözka S, Sakin F, Yeni D, Çiğerci, İH, Ateşşahin A, Avdatek F, Gündoğan M and Büyükleblebici O, 2010. The effect of raffinose and methionine on frozen/thawed Angora buck (Capra hircus ancryrensis) semen quality, lipid peroxidation and antioxidant enzyme activities. Cryobiology 61(1): 89-93.
Wang W, Niwa K and Okuda K, 1991. In-vitro penetration of pig oocytes matured in culture by frozen–thawed ejaculated spermatozoa. Reproduction 93(2): 491-496.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,359 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 619 |