تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,489,730 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,217,376 |
اثرات کشندگی و زیرکشندگی ترکیب دیفلوویدازین روی کنه قرمز مرکبات (Panonychus citri) | ||
پژوهش های کاربردی در گیاهپزشکی | ||
دوره 11، شماره 1، فروردین 1401، صفحه 49-59 اصل مقاله (1.13 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/arpp.2021.13504 | ||
نویسندگان | ||
میثم سلیمانی کراتی؛ محمد قدمیاری* ؛ آزاده کریمی ملاطی؛ الهه شفیعی علویجه | ||
گروه گیاهپزشکی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، گیلان ایران. | ||
چکیده | ||
چکیده کنه قرمز مرکبات، Panonychus citri یک گونه مهم آفت گیاهی در مناطق پرورش مرکبات جهان است. به علت استفاده از آفتکش های شیمیایی با طیف اثر وسیع علیه این آفت و آفات دیگر در مناطق مرکبات کاری، P. citri تبدیل به یک آفت جدی در باغهای مرکبات از جمله باغ های مرکبات شمال کشور شده است. در این تحقیق اثرات کنه کشی و زیرکشندگی ترکیب دیفلوویدازین روی مراحل مختلف زندگی کنه قرمز مرکبات مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که دیفلوویدازین روی مراحل تخم، لارو و دئوتونمف کنه قرمز مرکبات سمیت بالایی داشت. اثرات زیرکشندگی دیفلوویدازین روی پارامترهای جدول زندگی کنه قرمز مرکبات بررسی شد و نتایج کاهش معنی دار میانگین طول نسل، طول عمر افراد بالغ، دوره تخمریزی و باروری را نشان داد. نرخ خالص تولیدمثل (R0) به ترتیب برای شاهد و تیمار دیفلوویدازین 2/11 و 62/1 نتاج به ازای هر کنه ماده به دست آمد. نرخ ذاتی (r) و متناهی (λ) افزایش برای شاهد به ترتیب 133/0 و 142/1 بر روز و برای تیمار LC30 دیفلوویدازین به ترتیب 033/0 و 034/1 بر روز بود. به طور کلی غلظت زیرکشنده دیفلوویدازین روی همه پارامترهای رشد جمعیت در دئوتونمفهای تیمار شده اثر کنترل کنندگی داشت. در مجموع، نتایج نشان دهنده اثرات کشندگی و زیرکشندگی دیفلوویدازین روی کنه قرمز مرکبات بوده و می توان این ترکیبات را در قالب برنامه مدیریت مقاومت برای کنترل این کنه به کار برد. | ||
کلیدواژهها | ||
کلمات کلیدی: جدول زندگی؛ سم شناسی دموگرافیک؛ سمیت؛ کنهکش | ||
مراجع | ||
References
Askari SG, Hejazi MJ, Amizadeh M, 2013. Lethal and sublethal effects of spiromesifen, spirotetramat and spirodiclofen on Tetranychus urticae Koch (Acari: Tetranychidae). Archives of Phytopathology and Plant Protection 46(11): 1278–1284. Bolland HR, Gutierrez J, Flechtmann CHW, 1998. World Catalogue of the Spider Mite Family (Acari: Tetranychidae). Leiden, Brill Academic Publisher. 392 pp. Bretschneider T, Nauen R, 2007. Mite growth inhibitors (clofentezine, hexythiazox, etoxazole)., In: Schirmer, U, Krämer, W, Jeschke, P, and Witschel, M (eds), Modern Crop Protection Compounds, Wiley-VCH. Pp. 1012–1028. Carey JR, 1993. Applied Demography for Biologists: with Special Emphasis on Insects. Oxford University Press. Chi H, 2015. TWOSEX-MSChart: a computer program for the age-stage, two-sex life table analysis. Http://140.120 197. [Accessed on 3 Feb. 2022]. Demaeght P, Osborne EJ, Odman-Naresh J, Grbić M, Nauen R, et al., 2014. High resolution genetic mapping uncovers chitin synthase-1 as the target-site of the structurally diverse mite growth inhibitors clofentezine, hexythiazox and etoxazole in Tetranychus urticae. Insect Biochemistry and Molecular Biology 51: 52–61. Gabre RM, Adham FK, Chi H, 2005. Life table of Chrysomya megacephala (Fabricius) (Diptera: Calliphoridae). Acta Oecologica 27(3): 179–183. Gao C-F, Xu J-T, Zhou W-J, Chen J, Shen J-L, 2004. Laboratory toxicity studies with flufenzine against citrus red mite [J]. Pesticides. Gotoh T, Kitashima Y, Adachi I, 2004. Geographic variation of susceptibility to acaricides in two spider mite species, Panonychus osmanthi and P. citri (Acari: Tetranychidae) in Japan. International Journal of Acarology 30(1): 55–61. Havasi M, Kheradmand K, Mosallanejad H, Fathipour Y, 2018. Sublethal effects of diflovidazin on life table parameters of two-spotted spider mite Tetranychus urticae (Acari: Tetranychidae). International Journal of Acarology 44(2–3): 115–120. Havasi M, Kheradmand K, Mosallanejad H, Fathipour Y, 2019. Sublethal effects of diflovidazin on demographic parameters of the predatory mite, Neoseiulus californicus (Acari: Phytoseiidae). International Journal of Acarology 45(4), 238–244. Hu J, Wang C, Wang J, You Y, Chen F, 2010. Monitoring of resistance to spirodiclofen and five other acaricides in Panonychus citri collected from Chinese citrus orchards. Pest Management Science 66(9): 1025–1030. IRAC, 2020. Mode of Action Classification Scheme, Version 9.4. IRAC International MoA Working Group, Insecticide Resistance Action Committee. Jamieson LE, Stevens PS, 2009. Miticides against citrus red mites (Panonychus citri). New Zealand Plant Protection 62: 302–309. Jeschke P, Jeschke P, Witschel M, Krämer W, Schirmer U, 2019. Modern Crop Protection Compounds. John Wiley and Sons. Kasap İ, 2009. The biology and fecundity of the citrus red mite Panonychus citri (McGregor) (Acari: Tetranychidae) at different temperatures under laboratory conditions. Turkish Journal of Agriculture and Forestry 33(6): 593–600. Khajehali J, Van Nieuwenhuyse P, Demaeght P, Tirry L, Van Leeuwen T, 2011. Acaricide resistance and resistance mechanisms in Tetranychus urticae populations from rose greenhouses in the Netherlands. Pest Management Science 67(11): 1424–1433. Lei HD, Hu JH, Li HJ, Ran C, Zhang QB, et al., 2004. Performances of the citrus red mite, Panonychus citri (McGregor) (Acarina: Tetranychidae) on various citrus varieties. Acta Entomologica Sinica 47(5): 607–611. Li D, Tian J, Shen Z, 2006. Assessment of sublethal effects of clofentezine on life-table parameters in hawthorn spider mite (Tetranychus viennensis). Experimental and Applied Acarology 38(4): 255–273. Marcic D, 2003. The effects of clofentezine on life-table parameters in two-spotted spider mite Tetranychus urticae. Experimental and Applied Acarology 30(3): 249–263. Niu J-Z, Liu G-Y, Dou W, Wang J-J, 2011. Susceptibility and activity of glutathione S-transferases in nine field populations of Panonychus citri (Acari: Tetranychidae) to pyridaben and azocyclotin. Florida Entomologist 94(2): 321–330. Ochiai N, Mizuno M, Mimori N, Miyake T, Dekeyser M, et al., 2007. Toxicity of bifenazate and its principal active metabolite, diazene, to Tetranychus urticae and Panonychus citri and their relative toxicity to the predaceous mites, Phytoseiulus persimilis and Neoseiulus californicus. Experimental and Applied Acarology 43(3): 181–197. Rodenhouse NL, Best LB, O’Connor RJ, Bollinger EK, O’Connor RJ, et al., 2004. SAS Institute Inc. In SAS, 3. Sarkar S, Patra S, Biswas MK, Das BC, Biswas AK, 2014. Bio-efficacy of Modern Acaricides against Chilli Mite, Polyphagotarsonemus latus Banks. International Journal of Bio-Resource and Stress Management 5(4): 545–548. Sparks, TC, Nauen, R, 2015. IRAC: Mode of action classification and insecticide resistance management. Pesticide Biochemistry and Physiology 121: 122–128. Specifications FAO, 2004. Evaluations for agricultural pesticides. Malathion, Food and Agricultural Organization of the United States. Pp. 76. Vacante V. 2010. Citrus mites: identification, bionomy and control. CABI. Villanueva RT, Walgenbach JF, 2006. Acaricidal properties of spinosad against Tetranychus urticae and Panonychus ulmi (Acari: Tetranychidae). Journal of Economic Entomology 99(3): 843–849. Welty C, Reissig WH, Dennehy TJ, Weires RW, 1988. Susceptibility to hexythiazox of eggs and larvae of European red mite (Acari: Tetranychidae). Journal of Economic Entomology 81(2), 586–592. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,096 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 553 |