تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,489,149 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,216,835 |
گروهبندی ژنوتیپهای مختلف جو با استفاده از نشانگرهای مولکولی، مورفولوژیک و انتقال مجدد ماده خشک به دانه تحت شرایط تنش کمبود آب | ||
دانش کشاورزی وتولید پایدار | ||
مقاله 10، دوره 22، شماره 4.1، بهمن 1391، صفحه 135-150 اصل مقاله (307.51 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
مریم نخعی بدرآبادی1؛ مجید شکرپور* 2 | ||
1دانشگاه محقق اردبیلی | ||
2پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران | ||
چکیده | ||
در مناطق خشک و نیمه خشک، دسترسی به آب در زمان های حساس رشد گیاهان مهمترین عامل محدودکننده عملکرد اقتصادی میباشد. تحمل تنش آبی در یک ژنوتیپ گیاهی به برخی از ویژگیهای فیزیولوژیک و مورفولوژیک آن، از جمله صفات موثر در پایداری عملکرد و انتقال مجدد ماده خشک در شرایط تنش خشکی بستگی دارد. در مطالعه حاضر 26 لاین بههمراه 14رقم جو پاییزه، از نظر صفت فیزیولوژیک انتقال مجدد ماده خشک (مقدار، کارایی و سهم انتقال مجدد) و برخی صفات مورفولوژیک مورد ارزیابی قرار گرفتند. مقایسه میانگین بین ژنوتیپها از لحاظ صفات مربوط به انتقال مجدد ماده خشک از ساقه و پدانکل به دانه نشان داد که رقم صحرا و جو لخت چامیکو بیشترین و لاینهای Dari-friz88-A-3، Dari-friz88-A-8، Dari-friz88-A-6 و دایتون کمترین میزان انتقال مجدد ماده خشک از ساقه به دانه را در زمان پر شدن دانه دارا بودند. بیشترین عملکرد دانه در هر سه سطح تنش متعلق به لاین F-A3-3 بود. این لاین از وزن هزار دانه، تعداد دانه در سنبله و میزان، کارایی و سهم انتقال مجدد ماده خشک پدانکل و ساقه بالایی برخوردار بود. همچنین، با بهکارگیری نشانگرهای AFLP، ISSR و RAPD ارزیابی ژنوتیپی صورت گرفت. ژنوتیپها در 4 دسته با ضرایب تشابه متنوعی از 33/0 تا 958/0 دستهبندی شدند. لاینهای F-ERB-84-11 و F-A3-3 کمترین و لاین Dari-friz-A-8 و جو لخت آلاندا بیشترین فاصله ژنتیکی را از یکدیگر دارا بودند. نتایج نشان داد که نشانگر AFLP بیشترین کارایی را در تعیین پلیمورفیسم و تنوع ژنتیکی بین ژنوتیپها دارا میباشد. | ||
کلیدواژهها | ||
انتقال مجدد ماده خشک؛ تنش خشکی؛ تنوع ژنتیکی؛ جو و نشانگرهای مولکولی | ||
مراجع | ||
امام ی، 1386. تولید غلات. انتشارات دانشگاه شیراز. 190ص. بینام، 1388. نتایج طرح آمارگیری نمونهای گندم و جو. دفتر آمار و فناوری اطلاعات وزارت جهاد کشاورزی، ص 50. طوسی مجرد م و قنادها م ر 1385. ارزیابی پتانسیل عملکرد دانه و حرکت مجدد ماده خشک به دانه در ارقام تجاری گندم نان در دو شرایط نرمال و تنش خشکی. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی، صفحههای 326 تا 336. Blum A, (1999). Improving wheat grain filling under stress by stem reserves mobilization. Euphytica 100: 77-83. Bohn M, Utz, HF and Melchinger AE, (1999). Genetic similarities among winter wheat cultivars determined on the basis of RFLPs, AFLPs, and SSRs and their use for predicting progeny variance. Crop Sci 39: 228-237. Briggs DE, (1978). The origin and classification of barleys in barley. Chapman and Hall, London, Halsted press P: 76-88. Chen HB, Martin JM, Lavin M and Talbert LE, (1994). Genetic diversity in hard red spring wheat based on sequence-Tagged site PCR markers. Crop Sci 34: 1628-1632. Courtois B, McLaren G, Sinha PK, Prasad K, Yadav R and Shen L, (2000). Mapping QTL associated with drought avoidance in upland rice. Mol Breed 6: 55-66.
Dice LR, (1945). Measures of the amount of ecologic association between species. Ecology 26: 297-302. Farshadfar M, (1995). Transfer of alien genes from wild species in to cultivated wheat. PHD thesis, Hangarian academy of sciences, Hungry. Fischer RA and Maurer R, (1978). Drought tolerance in spring wheat cultivars. I. Grain yield responses. Aust J Agric Res 29: 897-912.
Gallagher JN, Biscoe PV and Scot RK, (1975). Barley and its environment. V. Stability of grain weight. J Appl Ecol 12: 319-336.
Garcia del Moral LF, Ramos JM, Garcia del Moral M.B and Jimenez-Tejada, P. (1991). Ontogenetic approach to grain production in spring barley based on path-coefficient analysis. Crop Science 31: 1179-1185.
Gent MPN and Kiyomoto RK, (1989). Assimilation and distribution of photosynthesis in winter wheat cultivars differing in harvest Index. Crop Sci 29: 105-125.
Hartl L, Mohler V, Zeller FJ, Hsam SLK and Schweizer G, (1999). Identification of AFLP markers closely linked to the powdery mildew resistance genes pm1c and pm4a in common wheat (Triticum aestivum). Genome 42: 322-329.
Hazen SP, Pathen MS, Sanchez A, Baxter I, Dunn M, Estes B, Chang HS, Zhu T, Kreps JA and Nguyen H, (2005). Expression profiling of rice segregating for drought tolerance QTLs using a rice genome array. Funct Integ Genomics 5: 104-116. Hong Q, Hou L, Luo XY, Li D, Xiao Y, Pei Y, Yang K and Jia C, (2001). Using RAPD for evaluating genetic background among naked barley varieties in Sishuan northwestern region. Scientia Agricultura Sinica 3: 133-138. Ito Y, Katsura K, Maruyama K, Taji T, Kobayashi M, Seki M, Shinozaki K and Yamaguchi-Shinozaki K, (2006). Functional Analysis of Rice DREB1/CBF-type Transcription Factors Involved in Cold-responsive Gene Expression in Transgenic Rice. Plant and Cell Physiol 47: 141-153. Kochieva EZ, Goryunova SV and Pomortsev AA, (2001). Rapd analysis of the genomic in species of the genus Hordeum. Genetika Moskova 37: 1088-1094. Kraich J, Zakova M and Gregova M, (1998). Comparision of differentiation capability of RAPD and SSR marker in commercial barley cultivars. Cereal Research Communications 26: 375-382. Kroth MA, Ramella MS, Tagliari C, de Francisco A and Arisi ACM, (2005). Genetic similarity of Brazilian hulless and malting barley varieties evaluated by RAPD markers . Scientica Agricola 62: 36-39. Li M, Guo W, Hu L, Liu X, Zhang Y, Wu R, Gong L, Zhang Z and Liu Bm (2007). Genetic variation in natural populations of Hordeum Brevisudulatum native to the songnen prairie in northeastern china: Comparision of four nuclear DNA: markers. Canadian Journal of Plant Science 87(4) 773-780.
Muminovic J, Melchinger AE and Lubberstedt T, (2004). Genetic diversity in cornsalad (Valerianella locusta) and related species as determined by AFLP markers. Plant Breeding 123: 460-466. Nei M and Li WH, (1979). Mathematical model for studing genetic variation in terms of restriction endonuclease. Proc Natl Acad Sci USA 76: 5269-5273.
Powell W, Morgante M, Andre C, Hanafey M, Vogel J, Tingey S and Refalski A, (1996). The comparison of RFLP, RAPD, AFLP and SSR (microsatellite) markers for germplasm analysis. Mol Breed 2: 225-238. Rao NK, (2004). Plant genetic resources: Advancing conservation and use through biotechnology. African J Biotech 3: 136-145.
Reddy MP, Sarla M, and Siddiq EA, (2002). Inter-simple sequence repeat (ISSR) polymorphism and its application in plant breeding. Euphytica 128: 9-17. Roldan-Ruiz FA, Gilliland TJ, Dubreuil P, Dillmann C and Lallemand J, (2001). A comparative study of molecular and morphological methods of describing relationships between perennial ryegrass (Lolium perenne L.) varieties. Theor Appl Genet 103: 1138-1150. Saghai-Maroof MA, Soliman KM, Jorgensen RA, Allard RW (1984). Ribosomal DNA spacer-length polymorphism in barley: Mendelian inheritance, chromosomal location and population dymnamics. Proc Nattl Acad Sci USA 81:8014-8018.
Schut JW, Qi X and Stem P, (1997). Association between relationship measures based on AFLP markers, pedigree data and morphological traits in barley. Theor Appl Genet 95: 1161-1168. Selbach A and Molina SC, (2000). RAPD characterization of Brazilian barley. Euphytica 111: 127-135. Shi YT, Bian HW, Han N, Pan JW, Tong WX and Zhu MY, (2004). Genetic variation analysis by RAPD of some barley cultivars in china. Acta Agronomica Sinica 30: 256-265. Simane BP, Struik C, Nachit MM, Peacock JM, (1993). Ontogenic analysis of yield components and yield stability of durum wheat in water0limited environments. Euphtyca 71: 211-219. Vansanford DA, .Mackown CT, (1987). Cultivar differences in nitrogen remobilization during grain filling in soft red winter wheat. Crop Sci 27: 295-300.
Vos P, Hogers R, Bleeker M, Reijans DL, Theovan M, Hornes M, Frijers A, Kuiper M and Zabeau M, (1995). AFLP: A new technique for DNA fingerprinting. Nucleic Acid Res 23: 4407-4414.
Welsh J and Mc Clelland M, (1990). Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers. Nucleic Acids Research 18: 7213-7218.
Yamaguchi-Shinozaki K, (2005). Organization of cis-acting regulatory elements in osmotic- and cold-stress responsive promoters. Trends Plant Sci 10: 88-94.
Zabeau M and Vos P, (1993). Selective restriction fragment amplification: a general method for DNA fingerprints. Euroupean Patent Application, Publ. 0534858A1.
Zhu J, Gale MD, Quarrie S, Jackson MT and Bryan GJ, (1998). AFLP markers for the study of rice biodiversity. TAG 96: 602-611. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,506 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,704 |