تعداد نشریات | 44 |
تعداد شمارهها | 1,303 |
تعداد مقالات | 16,035 |
تعداد مشاهده مقاله | 52,540,924 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 15,245,205 |
تأثیر مخلوط آنتیاکسیدان هدفمند MitoQ وغیرهدفمند پنتوکسیفیلین در رقیق کننده لیک بر بهبود کیفیت عملکردی اسپرم خروس راس طی نگهداری در دمای 4 درجه سانتیگراد | ||
پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی) | ||
دوره 30، شماره 3، آذر 1399، صفحه 71-83 اصل مقاله (1.6 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/as.2020.11511 | ||
نویسندگان | ||
حسین دقیق کیا* ؛ مهدی نظری | ||
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعاتی: در زمینه نگهداری اسپرم به صورت کوتاه و طولانی مدت پیشرفتهای قابل توجهی صورت گرفته است. اما این فرایند از طریق تولید گونههای فعال اکسیژن و کاهش فعالیت آنتیاکسیدانی (احمدی وضمیری 1386)، عملکرد و کیفیت اسپرم را متأثر میکند (احمدی وضمیری 1386). هدف: در این تحقیق از ترکیب آنتیاکسیدان هدفمند و غیرهدفمند به منظور کاهش استرس اکسیداتیو و بهبود عملکرد اسپرم طیور استفاده شد. مواد و روشها: در این مطالعه، اثرات آنتیاکسیدانی ترکیبی از آنتیاکسیدانهای هدفمند mitoQ و غیرهدفمند پنتوکسیفیلین در رقیق-کننده لیک بر پایه لسیتین مورد ارزیابی قرار گرفت. بدین منظور نمونههای منی از 15 خروس نژاد راس با سن 30 هفته به روش مالش پشتی-شکمی جمعآوری شدند. پس از رقیقسازی نمونهها و افزودن سطوح مختلفی از هر دو آنتیاکسیدان، نمونهها در دمای ºC4 به مدت 48 ساعت در یخچال نگهداری شده و در زمانهای 1، 24 و 48 ساعت نمونهها از نظر پارامترهای تحرکی، زندهمانی، یکپارچگی غشای پلاسمایی، و در زمان 48 ساعت میزان لیپید پراکسیداسیون و درصد اسپرمهای با مورفولوژی سالم مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج: تیمار 1 در یک ساعت پس از سردسازی باعث افزایش زندهمانی اسپرم نست به گروه کنترل شد (05/0p <). در 24 ساعت پس از سردسازی تیمار 1، 4 و 5 باعث افزایش حرکت پیشرونده شد. تیمار 4 و 5 باعث افزایش معنیدار تحرک کل و تیمار 5 باعث افزایش زندهمانی و تیمار 4 باعث افزایش معنیدار سلامت غشای اسپرم نسبت به گروه کنترل شد (05/0p <). در 48 ساعت پس از سردسازی تیمار 4 و 5 باعث کاهش معنیدار غلظت مالون دآلدهید و تیمارهای 1، 3، 4، 5 و 6 باعث کاهش معنیدار اسپرمهای ناسالم نسبت به گروه کنترل شد (05/0p <). نتیجهگیری نهایی: نتایج این مطالعه نشان داد که افزودن تیمار 5 (nM mitoQ2/0+ Mµ5/0 پنتوکسیفیلین) به نمونه منی در طی 48 ساعت سردسازی بهترین عملکرد را داشت. | ||
کلیدواژهها | ||
میتوکندری؛ لیپید پرآکسیداسیون؛ آنتیاکسیدان هدفمند؛ پنتوکسیفیلین؛ اسپرم خروس | ||
مراجع | ||
Ahmadi H and Zamiri MJ, 2007. Effect of vitamins E and C on the kinetic and fertility of diluted native Fars rooster sperm at 4-5 °C. Second Iranian Congress of Animal and Aquatic Sciences 1479: 1-5.
Akhter S, Rakha BA, Iqbal R and Ansari MS, 2014. Effect of bovine serum albumin on motility, plasmalemma, viability and chromatin integrity of buffalo bull spermatozoa. Pakistan Journal of Zoology 461:115-120.
Balercia G, Gandini L, Lenzi A and Lombardo F, 2017. Antioxidants in Andrology. Springer International Publishing 1-82.
Banihani SA and Abu‐Alhayjaa RF, 2016. The activity of seminal creatine kinase is increased in the presence of pentoxifylline. Andrologia 48: 603-604.
Blesbois E, 2011. Freezing avian semen. Avian biology research 4: 52–58.
Blesbois E, Grasseau I and Hermier D, 1999.Changes in lipid content of fowl spermatozoa after liquid storage at 2-5ºC. Theriogenology 52: 325-334.
Blesbois E, Grasseau I and Blum J C, 1993. Effects of vitamin E on fowl semen storage at 4 C. Theriogenology 39: 771-779.
Burrows W and Quinn J, 1937. The collection of spermatozoa from the domestic fowl and turkey.Poultry sciens 16:19-24
Chaudhry PS and Anand SR, 1975. Enzyme activities regulating adenosine 3', 5'-cyclic monophosphate of buffalo, bull and goat spermatozoa. Indian Journal of Biochemistry and Biophysics 12: 290-297.
Donoghue AM and Donoghue DJ, 1997. Effects of water-and lipid-soluble antioxidants on turkey sperm viability, membrane integrity, and motility during liquid storage. Poultry Science, 76: 1440-1445.
Esterbauer H and Cheeseman KH, 1990. Determination of aldehydic lipid peroxidation products: malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. Methods Enzymol 186: 407–421.
Esteves SC, Spaine DM and Cedenho AP, 2007. Effects of pentoxifylline treatment before freezing on motility, viability and acrosome status of poor quality human spermatozoa cryopreserved by the liquid nitrogen vapor method. Brazilian Journal of Medical and Biological Research 40: 985-992.
Evans G and Maxwell WMC, 1987. Handling and examination of semen. Salamon's artificial insemination of sheep and goats 20: 93-106.
Fang u, Chenglian B, Yuanhong C, Jun D, Yang X, Xiaoping J, Changjiang H and Dong Q, 2014. Inhibition of ROS production through mitochondria-targeted antioxidant and mitochondrial uncoupling increases post-thaw sperm viability in yellow catfish. Cryobiology 69(3): 386-393.
Guasti PNGA, Monteiro RRD, Maziero MT, Carmo JA, Dell’Aqua Jr AM, Crespilho EA, Rifai F and Papa O, 2017. Pentoxifylline effects on capacitation and fertility of stallion epididymal sperm. Animal Reproduction Sscience 179: 27-34.
Hancock JL, 1956. The morphology of boar spermatozoa. Journal of the Royal Microscopical Society 76: 84-97.
Herbemont C and Sifer C, 2015. How to select the spermatozoon for intracytoplasmic sperm injection in 2015?. Minerva Ginecologica 67: 185-193.
Jones DP, 2002. Redox potential of GSH/GSSG couple: Assay and biological significance. In Methods in enzymology 348: 93-112
KhoramAbadi F, Khodaei-Motlagh M and Moradi MH, 2017. Effect of in vitro selenium nanoparticles addition to the semen extender on the spermatozoa parameters after freezing in Farahani Ram 30(3): 301-307.
Kovačič B, Vlaisavljević V and Reljič M, 2006. Clinical use of pentoxifylline for activation of immotile testicular sperm before ICSI in patients with azoospermia. Journal of Andrology 27: 45-52.
Lecewicz M, Strzeżek R, Majewska AM, Purpurowicz PS and Kordan W, 2019. The effect of different concentrations of caffeine, pentoxifylline and 2’-deoxyadenosine on the biological properties of frozen-thawed canine semen. Annals of Animal Science 19(3): 736-746
Lewis SEM, McKinney, KA and Thompson W, 1994. Influence of pentoxifylline on human sperm motility in asthenozoospermic individuals using computer-assisted analysis. Archives of Andrology 32: 175-183.
Liu L, Wang MJ, Yu TH, ChengZLi, M and Guo QW, 2016. Mitochondria targeted antioxidant mitoquinone protects post-thaw human sperm against oxidative stress injury. Andrology 22(3):205-215
Łukaszewicz E, Jerysz A, Partyka A and Siudzińska A, 2008. Efficacy of evaluation of rooster sperm morphology using different staining methods. Research in Veterinary Science 85(3): 583-588.
MacLeod J, and Gold RZ, 1953. The male factor in fertility and infertility. VI semen. Quality and certain other factors in relation to ease of conception. Obstetrical and Gynecological Survey 8(4): 604-606.
Margaret Tarvis k, 2013. New methods for cryopreserving rooster spermatozoa. In partial fulfillment of the requirements for the Degree of Master of Science Colorado State University Fort Collins, Colorado.
Mirzaei Rad H, Eslami M and GhanieA, 2015. Palmitoleate enhances quality of rooster semen during chilled storage. Animal Reproduction Science 165: 38–45.
Pellegrini N, Simonetti P, Gardana C, Brenna O, Brighenti F, and Pietta P, 2000. Polyphenol content and total antioxidant activity of vini novelli (young red wines). Journal of Agricultural and Food Chemistry 48(3): 732-735.
Revell SG and Mrode RA, 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science 36: 77-86.
Sancler-Silva YF, Ball BA, Esteller-Vico A, Silva-Júnior ER, Freitas-Dell’aqua CP and Papa FO, 2018. Sperm quality of stallions treated with pentoxifylline after scrotal heat stress. Journal of Equine Veterinary Science 66: 87.
Sanocka D and Kurpisz M, 2004.Reactive oxygen species and sperm cells. Reproductive Biology and Endocrinology 2: 1-7.
Schäfer S, and Holzmann A, 2000. The use of transmigration and Spermac™ stain to evaluate epididymal cat spermatozoa. Animal Reproduction Science 59: 201-211.
Seidler NW and Swislocki NI, 1992. The Effects of Pentoxifylline on the Plasma Membrane Ca2+ ATPase in Age‐Separated Rat and Human Erythrocytes. The Journal of Clinical Pharmacology 32: 332-337.
Shahverdi A, Sharafi M, Gourabi H, Yekta AA, Esmaeili V, Sharbatoghli M, Janzamin E, Hajnasrollahi M, Mostafayi F, 2015. Fertility and flow cytometric evaluations of frozen-thawed rooster semen in cryopreservation medium containing low-density lipoprotein. Theriogenology 83: 78-85.
Skulachev VP, Anisimov VN, AntonenkoYN, Bakeeva, LE, Chernyak, BV, Erichev, VP, Filenko, OF, Kalinina, NI, Kapelko, VI, Kolosova, NG, Kopnin, BP, Korshunova, GA, Lichinitser MR, Obukhova LA, Pasyukova EG, Pisarenko OI, Roginsky VA, Ruuge EK, Senin II, Severina II, Skulachev MV, Spivak IM, Tashlitsky N, Tkachuk VA, Vyssokikh MY and LSand Zorov DB, 2009. An attempt to prevent senescence: A mitochondrial approach. Biochimica et Biophysica Acta 1787: 437–461.
Smith RA. and Murphy MP, 2010. Animal and human studies with the mitochondria‐targeted antioxidant MitoQ. Annals of the New York Academy of Sciences 1201: 96-103.
Smith RA, Porteous, CM, Coulter, CV and Murphy MP, 1999. Selective targeting of an antioxidant to mitochondria. European Journal of Biochemistry 263: 709-716.
Surai PF, Cerolini S, Wishart GJ, Spake BK, Noble RC and Sparks NHC, 1998. Lipid and antioxidant composition of chicken semen and its susceptibility to peroxidation. Poult. Avian Biol 9: 11-23.
Yovich JL, 1993. Pentoxifylline: actions and applications in assisted reproduction. Human reproduction 8: 1786-1791.
Zhandi M and Sharafi M, 2015. Negative effect of combined cysteine and glutathione in soy lecithin-based extender on post-thawed ram spermatozoa. Cell and tissue banking 16(3), 443-448.
Zhang J, Bao X, Zhang M, Zhu Z, Zhou L, Chen Q, Zhang Q and Ma B, 2019. MitoQ ameliorates testis injury from oxidative attack by repairing mitochondria and promoting the Keap1-Nrf2 pathway. Toxicology and applied pharmacology 370: 78-92.
Wang WH, Niwa K,and Okuda K, 1991. In-vitro penetration of pig oocytes matured in culture by frozen–thawed ejaculated spermatozoa. Reproduction and Fertility 93: 491-496. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,050 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,145 |