آمار
| تعداد نشریات | 45 |
| تعداد شمارهها | 1,477 |
| تعداد مقالات | 18,019 |
| تعداد مشاهده مقاله | 58,387,254 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 19,805,901 |
کارایی چند حامل مایع در افزایش زندهمانی باکتری Enterobacter cloacae S16-3 و اثر زادمایههای تهیه شده بر جوانهزنی و رشد بذور گندم | ||
| دانش آب و خاک | ||
| دوره 33، شماره 2، تیر 1402، صفحه 243-256 اصل مقاله (484.71 K) | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22034/ws.2021.32875.2243 | ||
| نویسندگان | ||
| فاطمه قاسمی1؛ محمد رضا ساریخانی* 2؛ نصرت اله نجفی3 | ||
| 1دانشجوی کارشناسی ارشد بیولوژی و بیوتکنولوژی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
| 2دانشیار بیولوژی و بیوتکنولوژی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
| 3استاد شیمی و حاصلخیزی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
| چکیده | ||
| در کشاورزی پایدار کودهای زیستی جایگاه ویژهای دارند. برای عرضه آنها از حاملهای مختلف برای حفظ ماندگاری و زندهمانی باکتری استفاده میشود. این تحقیق با هدف بررسی زندهمانی باکتری Enterobacter cloacae S16-3 بر روی حاملهای مختلف مایع در مدت زمان یک سال انجام پذیرفت. زادمایههای مایع شامل 9 تیمار با ترکیب گلیسرول، پلی اتیلن گلیکول (PEG)، ترهالوز، کربوکسی متیل سلولز ((CMC، صمغ عربی، پلیوینیل پیرولیدون ((PVP، گلوکز و نشاسته با مقادیر مشخص و در حالات تلفیقی مختلف بودند. در این بررسی، زادمایههای باکتریایی تهیه شده با جمعیت اولیه یکسان (CFU mL-1109) پس از نگهداری در دمای اتاق، از نظر توان ماندگاری و زندهمانی باکتری مورد مقایسه قرار گرفتند. جمعیت باکتری در زمانهای 0، 15، 30، 60، 90، 120، 180، 270 و 365 روز شمارش شد. برای شمارش باکتریهای زنده در زادمایههای میکروبی، بعد از تهیه سریهای رقت از روش شمارش در کشت نواری درون یک پلیت استفاده گردید. همچنین در این تحقیق اثرات زادمایههای تهیه شده بر جوانهزنی و رشد گیاهچههای گندم در شرایط استریل و به دو روش کشت در پلیت شیشهای و کشت گلدانی بررسی شد. در کشت گلدانی خصوصیاتی از قبیل طول ساقه و ریشه، وزن تر و خشک ساقه و ریشه اندازهگیری شد. نتایج حاصل از شمارش باکتریها نشان داد که از میان زادمایههای مایع، بیشترین جمعیت شمارش شده بعد از گذشت یک سال در فرمولاسیون F5 (صمغ عربی، نشاسته و PEG) (CFU mL-1107) و کمترین جمعیت شمارش شده در فرمولاسیون F7 (گلیسرول، ترهالوز، گلوکز، صمغ عربی و PEG) به دست آمد، بهطوریکه بعد از گذشت 6 ماه، هیچ جمعیت زنده باکتری شمارش نگردید. همچنین نتایج حاصل از تست جوانهزنی و رشد گیاهچههای گندم در پلیت نشان داد که مواد مورد استفاده در زادمایههای میکروبی اثر بازدارنده بر جوانهزنی بذرها نداشته و حتی در مواردی باعث ترغیب رشد و بهبود جوانهزنی و رشد آنها گشتهاند. به طوری که تمامی بذور مورد استفاده درحضور مایههای تلقیح به طور همزمان شروع به جوانهزنی نمودند. در کشت گلدانی نیز فرمولاسیون F9 (گلیسرول، گلوکز، صمغ عربی و PEG) و F4 (ترهالوز، صمغ عربی و PEG) از نظر وزن تر ریشه (به ترتیب 1020 و 740 میلیگرم) و وزن تر کل (1800 و 1390 میلیگرم) میانگینهای بالاتری را به همراه داشتند. مقایسه این زادمایهها با تیمارهای شاهد (بدون باکتری و بدون حامل) و سوسپانسیون باکتری (مایه تلقیح بدون حامل) نشان داد که این زادمایهها در تمام خصوصیات اندازهگیری شده، توانستهاند اثرگذار باشند. با توجه به یافتههای این پژوهش از میان فرمولاسیونهای مورد آزمایش، زادمایه F5 و F9 در افزایش زندهمانی باکتری بهترین نتایج را به همراه داشتند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| حامل؛ زندهمانی باکتری؛ کودهای زیستی؛ کشت نواری؛ گندم؛ مایه تلقیح مایع | ||
| مراجع | ||
|
Brahmaprakash G and Sahu PK, 2012. Biofertilizers for sustainability. Journal of the Indian Institute of
Science 92(1): 37-62.
Bazilah AB, Sariah M, Abidin MZ and Yasmeen S, 2011. Effect of carrier and temperature on the viability
of Burkholderia sp.(UPMB3) and Pseudomonas sp.(UPMP3) during storage. International Journal of
Agriculture and Biology 13(2): 198-202.
Coombs J and Wimpenny J, 1982. Growth of Bacillus cereus in a gel-stabilized nutrient gradient system.
Microbiology 128(12): 3093-3101.
Cakmakci RI, Donmez MF and Erdogan U, 2007. The effect of plant growth promoting rhizobacteria on
barely seedling growth, nutrient uptake, some soil properties, and bacterial counts. Turkish Journal of
Agriculture 31: 189-199.
Cortés-Patiño S and Bonilla RR, 2015. Polymers selection for a liquid inoculant of Azospirillum brasilense
based on the Arrhenius thermodynamic model. African Journal of Biotechnology 14(33): 2547-2553.
Dayamani K, 2010. Formulization and determination of effectiveness of liquid inoculants of plant growth
promoting rhizobacteria. University of Agricultural Sciences GKVK. Bangalore.
Egamberdiyeva D, Juraeva D, Poberejskaya S, Myachina O, Teryuhova P, Seydalieva L and Aliev A, 2004.
Improvement of wheat and cotton growth and nutrient uptake by phosphate solubilizing bacteria. Pp.
58-65. In: Jordan D and Caldwell D(eds). 26th Southern Conservation Tillage Conference for
Sustainable Agriculture. 8-9 June, Raleigh, North Carolina.
Fernandes Júnior PI, Rohr TG, Oliveira PJd, Xavier GR and Rumjanek NG, 2009. Polymers as carriers for
rhizobial inoculant formulations. Pesquisa Agropecuária Brasileira 44(9): 1184-1190.
Ghasemi Piranlo F, Sarikhani MR and Najafi N, 2019. Study the survival of Enterobacter cloacae bacteria in
several solid carriers and effect of prepared inoculants on germination and growth of wheat. Journal of
Agricultural Science and Sustainable Production 29(3): 167-180. (In Persian with English abstract)
Hynes RK, Jans DC, Bremer E, Lupwayi NZ, Rice WA, Clayton GW and Collins MM, 2001. Rhizobium
population dynamics in the pea rhizosphere of rhizobial inoculant strain applied in different
formulations. Canadian Journal of Microbiology 47(7): 595-600.
John RP, Tyagi R, Brar S, Surampalli R and Prévost D, 2011. Bio-encapsulation of microbial cells for
targeted agricultural delivery. Critical Reviews in Biotechnology 31(3): 211-226.
Khalafalla M and Daffalla H, 2008. In vitro micropropagation and micrografting of gum arabic tree [Acacia
senegal (L.) Wild]. International Journal of Sustainable Crop Production 3(1): 19-27.
Lin YC, Chen TL, Ju HL, Chen HS, Wang FD, Yu KW and Liu CY, 2006. Clinical characteristics and risk
factors for attributable mortality in Enterobacter cloacae bacterium. Journal of Microbiology,
Immunology and Infection 39(1): 67-72.
Lippert K and Galinski EA, 1992. Enzyme stabilization be ectoine-type compatible solutes: protection
against heating, freezing and drying. Applied Microbiology and Biotechnology 37(1): 61-65.
Malusá E, Sas-Paszt L and Ciesielska J, 2012. Technologies for beneficial microorganisms inocula used as
biofertilizers. The Scientific World Journal 49(6): 1-12.
Mugnier J and Jung G, 1985. Survival of bacteria and fungi in relation to water activity and the solvent
properties of water in biopolymer gels. Applied and Environmental Microbiology 50(1): 108-114.
Mary P, Ochin D and Tailliez R, 1985. Rates of drying and survival of Sinorhizobium meliloti strains during
storage at different relative humidities. Applied and Environmental Microbiology 50(2): 207-211.
Moradi SH and Sarikhani MR, 2016. Comparison of dissolution of phosphate from sources of phosphate
rock and tricalcium phosphate by some phosphate solubilizing bacteria. Pp. 1-6. Second National
Congress for the Development of Science and Natural Resources. 11 May, Gorgan, Iran. (In Persian
with English abstract)
Meshram SU and Shend ST, 1982. Response of maize to Azotobacter chroococcum. Plant and Soil 69:265-
Nita P, Pallavi G, Shubhangi S, Hemlata S, Neha P and Balasaheb K, 2012. Liquid formulations of
Acetobacter diazotrophicus L1 and Herbaspirillum seropedicae J24 and their field trials on wheat.
International Journal of Environmental Sciences 3(3): 1116.
Oskuei BK, Bandehagh A, Sarikhani MR and Komatsu S, 2018. Protein profiles underlying the effect of
plant growth-promoting rhizobacteria on canola under osmotic stress. Journal of Plant Growth
Regulation 37(2): 560-574.
Omer AM, 2010. Bioformulations of Bacillus spores for using as biofertilizer. Life Science Journal 7(4):
124-131.
Peng Y He Y, Han Y and Dang Y, 2015. Survability of Pseudomonas putida RS-198 in liquid formulations
and evaluation its growth-promoting abilities on cotton. The Journal of Animal and Plant Sciences
25(1): 180-189.
Prameela K, Murali MCH and Hemalatha KPJ, 2010. Extraction of pharmaceutically important chitin and
carotenoids from shrimp biowaste by microbial fermentation method. Journal of Pharm Research 3:
2393-2395.
Rivera D, Obando M, Barbosa H, Rojas Tapias D and Bonilla Buitrago R, 2014. Evaluation of polymers for
the liquid rhizobial formulation and their influence in the Rhizobium-cowpea interaction. Universitas
Scientiarum 19(3): 265-275.
Rohr T, 2007. Estudo reológico da mistura carboximetilcelulose/amido e sua utilização como veículo de
inoculação bacteriano. Dissertação (Mestrado)-Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro,
Seropédica.
Rajabali Jamaat P, Asgharzadeh A, NoohiA, SalehiM, Khavazi K and Akhavan Sepahi A, 2010. The effect
of additives in the formulation of biological fertilizers on the germination of cotton seeds. Journal of
Microbiological Knowledge 1(3): 41-47. (In Persian with English abstract)
Singleton P, Keyser H and Sande E, 2002. Development and evaluation of liquid inoculants. Inoculants and
nitrogen fixation of legumes in Vietnam. ACIAR Proceedings 109: 52-66.
Sanz T, Fernandez M, Salvador A, Munoz J and Fiszman S, 2005. Thermogelation properties of
methylcellulose (MC) and their effect on a batter formula. Food Hydrocolloids 19(1): 141-147.
Sarikhani MR, 2017. Practical Methods for the Quality Control of Inoculant Biofertilizers. Pp. 58-63,
Morteza Dasht Publication, Iran. (In Persian)
Sridhar V, Brahmaprakash GP and Hegde SV, 2004. Development of a liquid inoculant using
osmoprotectants for phosphate solubilizing bacterium (Bacillus megaterium). Karnataka Journal of Agricultural Sciences 17(2):251-257.
Tittabut P, 2005. Development of rhizobial liquid inoculant production, Thailand. Ph.D. Thesis
Biotechnology School of Biotechnology, Suranaree University of Technology.
Tittabutr P, Payakapong W, Teaumroong N, Singleton PW and Boonkerd N, 2007. Growth, survival and
field performance of Bradyrhizobium liquid inoculant formulations with polymeric additives. Science
Asia 33(1): 69-77.
Temprano F, Albareda M, Camacho M, Daza A, Santamaria C and Rodríguez-Navarro ND, 2002. Survival
of several Rhizobium/Bradyrhizobium strains on different inoculant formulations and inoculated seeds.
International Microbiology 5(2): 81-86.
Velineni S and Brahmaprakash G, 2011. Survival and phosphate solubilizing ability of Bacillus megaterium
in liquid inoculants under high temperature and desiccation stress. Journal of Agricultural Science and
Technology 13: 795-802.
Xavier IJ, Holloway G and Leggett M, 2004. Development of rhizobial inoculant formulations. Crop
Management 3(1): 1-6.
| ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 560 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 469 |
||